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- medchemexpress(MCE)
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- 2025年07月15日
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充足
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medchemexpress(MCE)
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1g
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文献和实验纯化。由于蛋白质种类繁多，不同的蛋白质由于结构和组成的差异，其溶解度也各不相同.根据蛋白质的溶解特性，同时可选择不同的溶剂提取，分为水溶液提取和有机溶剂提取. 但是针对膜蛋白的提取与细胞质蛋白，核蛋白提取不同之处在于它是嵌在膜中的，水溶性不好，基本方法就是用不同的离心速度去掉胞质蛋白等，最后用去污剂把蛋白从膜中释放出来。膜蛋白分离纯化的重要步骤是选择适当的增溶用表面活性剂，一般常用的有胆酸盐，CHAPS(一种离子去污剂），Emulgen和Lubrol等表面活性剂。
上，去垢剂只有在 pH 范围内完全电离为两性离子才可用于 IEF。 两种传统用于双向电泳的去垢剂是非离子型去垢剂 Triton X-100 ( 或 NP- 40 ) 和两性离子去垢剂 3 [3-cholaminoproply diethylammonio] -1-propane sulfate (CHAPS ) 。两种去垢剂都已尿素结合广泛使用，但没有被证明在溶解难溶性蛋白质（如膜蛋白）方面非常有效 [7] 。然而，最近的工作表明，无论是特别设计的两性离子去垢剂 [ 8~10
含有的去污剂，树脂能够从蛋白水溶液和肽样本中去除自由的，未结合的阴离子的，非离子或两性离子的去污剂 (e.g. SDS, Triton® X-100 或 CHAPS)，同时对于下游进行的质谱或其他技术的分析应用带来最小的样本丢失。 DetergentOUT™ GB-S10 柱子在第三方的研究使用中表明完全兼容 DI-QTOF 和 LC-MS/MS（请见参考文献）。DetergentOUT™ GB-S10 柱子的使用显著增加到了检测到的肽光谱的数量。除此之外，DetergentOUT™ GB
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