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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
58
- 供应商:
上海晶抗生物工程有限公司
- 检测范围:
科研检测
- 检测方法:
ELISA法
- 应用:
用于科研实验检测,定量定性检测
- 标记物:
血清,血浆及相关液体等
- 样本:
血清,血浆及相关液体等样本
- 规格:
48T/96T
【检测试剂盒样本储存】:
收集标本前必须清楚要检测的成份是否足够稳定。对收集后当天进行检测的标本,储存在4℃备用,如有特殊原因需要周期收集标本,将标本及时分装后放在-20℃或-70℃条件下保存。避免反复冻融。标本2-8℃可保存48小时,-20℃可保存1个月。-70℃可保存6个月。部分激素类标本需添加抑肽酶。
【检测试剂盒种属】:
鹿、羊、鸡、鸭、狼、鱼、马、牛、人、大鼠、犬、小鼠、豚鼠、仓鼠、裸鼠、马铃薯、兔子、猪、猴等动植物。
大鼠TGF-β诱导早期基因1检测试剂盒的实验加样:加样或加试剂时,个孔与后一个孔加样之间的时间间隔如果太大,将会导致不同的 “预温育”时间,从而明显地影响到测量值的准确性及重复性。一次加样时间(包括标准品及所有样品)控制在10分钟内。产品试验以灵敏度较高、特异性较的特点在临床上得到了广泛的应用。
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文献和实验替代治疗或肾移植。肾脏纤维化是 CKD 患者几乎普遍存在的一种病理变化。已有研究结果显示 miR-29b 可以抑制肾纤维化,因此 miR-29b 替代疗法可能是肾纤维化治疗的有效方法。这篇文章主要研究 miR-29b 用于肾脏纤维化基因治疗的可行性。 实验设计 确定最适合肾脏靶向基因递送的 AAV 血清型。 体外实验:在正常大鼠成纤维细胞、NRK-49F、TEC 和 NRK-52E 细胞中评估 miR-29b 对 TGF-β1 诱导的肾细胞纤维化的影响。 体内实验:在 UUO 小鼠模型中评估 miR
(TGF-β) TGF-β最初是由Robert等学者在1978年作为一种可诱导大鼠成纤维细胞增殖因子而描述。T GF-β可以诱导间充质细胞转化为软骨细胞。现已实验证明TGF-βs具有促进软骨细胞增 殖、调节其分化和胞外基质合成的能力[3]。F.Redni等实验证明培养兔关 节软骨细胞表达了不同的TGFβ受体且与软骨细胞生长周期功能有关,软骨细胞在S期表现了 低亲和力受体表型(kd=appiox 1100pm)然而GO/G期的软骨细胞表现了高亲和力受体。因此 , TGF-β对软骨
-like)活性区,二个负调控区和二个启动子区。 3.TGF-β受体许多细胞表面都有TGF-β受体。大鼠成纤维细胞系NRK-49F和BALB/c 3T3细胞表面TGF-β受体亲和力Kd值为5.6~14*10 -1 1M,每个细胞TGF-β结合点约1.6~1.9*104。在淋巴细胞表面,TGF-βRKd值1~5.1*10-12M。T细胞、B细胞每个细胞TGF-βR数约250,活化后受体数量可增加5~6倍,但Kd值无明显变化。造血细胞表面TGF-βR对TGF-β1亲和力要比TGF-β
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