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组织血流成像仪,小动物血流仪,小动物组织血流测量仪

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  • CHINA
  • 组织血流成像仪,激光多普勒血流仪,血流仪
  • 2026年01月13日
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    • 供应商

      玉研仪器公司

    • 现货状态

      现货

    • 保修期

      12个月

    • 规格

      敬请来电咨询

    激光散斑血流成像仪采用新兴的LSCI 技术设计(laser speckle contrast imaging,激光散斑衬比分析成像),以独有的非接触、高分辨、全场快速成像的技术优势,为临床医疗及生命科学基础研究提供了一种全新有效的血流监测及血流成像的手段。仪器无需任何造影剂,时间分辨率可达毫秒量级,空间分辨率可达微米量级,实现了科研及医疗人员实时观察微血管的血流分布状态及血流数值相对变化的功能需求。


    实验动物激光散斑血流成像仪采用新兴的LSCI 技术设计,以独有的非接触、高分辨、全场快速成像的技术优势,为临床医疗及生命科学基础研究提供了一种全新有效的血流监测及血流成像的手段。

    上海玉研公司的LS系列激光散斑血流成像仪以独有的非接触、高分辨、全场快速成像的技术优势,为临床医疗及生命科学基础研究提供了一种全新有效的血流监测及血流成像的手段。仪器无需任何造影剂,时间分辨率可达毫秒量级,空间分辨率可达微米量级,实现了科研及医疗人员实时观察微血管的血流分布状态及血流数值相对变化的功能需求。应用激光散斑血流成像技术,采用更大的成像视野,在保证清晰度的情况下实现更广的成像范围,适用于从小动物如大小鼠,大动物如猪狗至人体的研究。

    仪器无需任何造影剂,时间分辨率可达毫秒量级,空间分辨率可达微米量级,实现了科研及医疗人员实时观察微血管的血流分布状态及血流数值相对变化的功能需求。


    产品组成:

    激光散斑主机,进行图像和数据分析的处理器
    产品细节图片1
    型号:LS-200


    仪器特点:
    超高的成像精度:成像精度作为产品最核心的功能,在相同操作下,能够看到更清楚的血管细节。以脑部为例,我们的仪器能够看到小鼠脑部末端毛细血管。
    卓越的相应速度:设备的响应速度在200毫秒以内。在对动物进行血流阻断或恢复实验后能够迅速显示变化。
    小巧的输出文件:仪器单个输出文件在3兆左右,数据可连续记录数个小时。通过数十年的算法积累,实现了优秀的数据处理能力,在保持高清完整的实验数据的前提下,将记录文件做到更小。
    简洁的软件操作:血流仪附配的软件操作简单;图像清晰,内部优化参数已经通过长期实践优化完善,无需客户处理;选择自由度高,能够分析任意时间段、任意区域的血流值,可以选择任意时间作为参考;自动化导出报告,能够自动生成包括血流柱状图、折线、表格等数据,并生成报告,方便分析。

    技术原理简介:
    激光散斑(laserspeckle):当激光照射在相对粗糙(和光的波长相比)的组织表面上,经过不同光程的散射光之间相互干涉,形成随机干涉图样,即散斑。
    当被激光照亮的区域经过CCD 成像系统时,产生颗粒状或斑纹状像面散斑。如果散射介质(如血细胞)在运动,图象中的每一个象素将产生随时间变化的散斑图样。该图样在时间和空间上的强度变化包含着散射介质的运动信息。通过分析散斑强度在时间和强度变化的空间统计特性,可获得定量的流速信息。


    产品细节图片2


    主要技术参数:
    参数 型号
    LS-200 LS-150
    激光波长 785nm 785nm
    工作距离 100-500mm 100-250mm
    采集相机分辨率 2048*2048 2048*2048
    血流成像速度 >100fps >100fps
    对焦方式 自动对焦 手动对焦
    血流成像模式 高分辨成像、快速成像
    图像配准 组织结构/彩色图像/血流图像
    感兴趣区域(ROI)血流均值分析 具备选择、复制、删除,拖放和编辑功能
    TOI血流均值分析 支持血流均值及血流均值相对变化的分析 
    单位面积像素 8,400,000像素/cm2
    事件打标功能 支持在采集过程中的特征性时刻进行打标记录
    数据存储格式 流速数据/标准图像/视频等多种数据保存格式
     
     
    LS-200型激光散斑血流仪免费试用进行时,敬请来电咨询。
     
     
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    产品细节图片3


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    该产品被引用文献

    小动物激光多普勒血流仪相关文献:
    1. Yamanaka H, Yamaoka T, Mahara A, et al. Tissue-engineered submillimeter-diameter vascular grafts for free flap survival in rat model. Biomaterials. 2018;179:156-163. doi:10.1016/j.biomaterials.2018.06.022.
    2. Liu Y, Mahara A, Kambe Y, et al. Endothelial cell adhesion and blood response to hemocompatible peptide 1 (HCP-1), REDV, and RGD peptide sequences with free N-terminal amino groups immobilized on a biomedical expanded polytetrafluorethylene surface. Biomater Sci. 2021;9(3):1034-1043. doi:10.1039/d0bm01396j.
    3. Nosaka M, Ishida Y, Kimura A, et al. Crucial Involvement of IL-6 in Thrombus Resolution in Mice via Macrophage Recruitment and the Induction of Proteolytic Enzymes. Front Immunol. 2020;10:3150.doi:10.3389/fimmu.2019.03150.
    4. Fukumoto Y, Tanaka KF, Parajuli B, et al. Neuroprotective effects of microglial P2Y1 receptors against ischemic neuronal injury. J Cereb Blood Flow Metab. 2019;39(11):2144-2156. doi:10.1177/0271678X18805317.
    5. Morihara R, Yamashita T, Osakada Y, et al. Efficacy and safety of spot heating and ultrasound irradiation on in vitro and in vivo thrombolysis models. J Cereb Blood Flow Metab. 2022;42(7):1322-1334. doi:10.1177/0271678X221079127.
    6. Nosaka M, Ishida Y, Kimura A, et al. Contribution of the TNF-α (Tumor Necrosis Factor-α)-TNF-Rp55 (Tumor Necrosis Factor Receptor p55) Axis in the Resolution of Venous Thrombus. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2018;38(11):2638-2650. doi:10.1161/ATVBAHA.118.311194.
    7. Tanaka M, Ogaeri T, Samsonov M, et al. The 5α-Reductase Inhibitor Finasteride Exerts Neuroprotection Against Ischemic Brain Injury in Aged Male Rats. Transl Stroke Res. 2019;10(1):67-77. doi:10.1007/s12975-018-0624-0.
    8. Sakata Y, Yoshida C, Fujiki Y, et al. Effects of Casein Hydrolysate Ingestion on Thermoregulatory Responses in Healthy Adults during Exercise in Heated Conditions: A Randomized Crossover Trial. Nutrients. 2020;12(3):867. doi:10.3390/nu12030867.

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