- ¥1800 - 2680
- TSZ
- 见说明书
- 中国/美国/德国
- xy-CL-R0701c
- 2025年07月15日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量
- 供应商：
信裕生物
- 检测范围：
见说明书
- 检测方法：
酶联免疫
- 应用：
科研
- 标记物：
见说明书
- 样本：
血清/组织/尿液
大鼠磷酸化Tau蛋白(pτ)化学发光免疫分析试剂盒本试剂盒采用双抗体夹心法。用抗大鼠pτ抗体包被于酶标板上，实验时标本或标准品中的pτ会与包被抗体结合，游离的成分被洗去。依次加入生物素化的抗大鼠pτ抗体和辣根过氧化物酶标记的亲和素。抗大鼠pτ抗体与结合在包被抗体上的大鼠pτ结合、生物素与亲和素特异性结合而形成免疫复合物，游离的成分被洗去。加入发光底物混合液，发光底物在辣根过氧化物酶的催化下发出荧光，用化学发光免疫分析仪测定化学发光值（RLU），pτ浓度与化学发光值之间呈正相关，通过绘制标准曲线求出标本中pτ的浓度。
| 英文名称 | Rat pτ (phospho Tau Protein) CLIA Kit | ||
| 中文名称 | 大鼠磷酸化Tau蛋白(pτ)化学发光免疫分析试剂盒 | ||
| 货号 | 种属 | Rat/大鼠 | |
| 规格 | 96T/Kit (8*12 wells) | ||
| 检测方法 | 双抗体夹心法 | ||
| 检测范围 | 7.813~500pg/mL | 灵敏度 | 4.688pg/mL |
| 中文名称 | 英文名称 | 规格 | 保存 |
| CLIA酶标板 | Micro CLIA Plate | 8×12 wells | 4℃/-20℃ # |
| 冻干标准品 | Reference Standard | 2 支 | 4℃/-20℃ # |
| 标准品&样品稀释液 | Reference Standard & Sample Diluent | 1瓶 20mL | 4℃ |
| 浓缩生物素化抗体 | Concentrated Biotinylated Detection Ab | 1支 120μL | 4℃/-20℃ # |
| 生物素化抗体稀释液 | Biotinytated Detection Ab Diluent | 1瓶10mL | 4℃ |
| 浓缩HRP酶结合物 | Concentrated HRP Conjugate | 1支 120μL | 4℃(避光) |
| 酶结合物稀释液 | HRP Conjugate Diluent | 1瓶 10mL | 4℃ |
| 浓缩洗涤液（25×） | Concentrated Wash Buffer (25×) | 1瓶 30mL | 4℃ |
| 发光底物A液 | Substrate Reagent A | 1瓶 5mL | 4℃(避光) |
| 发光底物B液 | Substrate Reagent B | 1瓶 5mL | 4℃(避光) |
| 封板覆膜 | Plate Sealer | 5 张 | |
| 产品说明书 | Manual | 1 份 | |
| 质检报告 | Certificate of Analysis | 1 份 | |
| 特别说明： #: 一周内使用可存于4℃，需长时间存放或多次使用建议存于-20℃. |
|||
2. 倒去孔内液体，拍干，加入 100μL 生物素化抗体工作液，37℃孵育 60 分钟
3. 洗涤 3 次
4. 加入 100μL 酶结合物工作液， 37℃孵育 30 分钟
5. 洗涤 5 次
6. 加入 100μL 发光底物混合液， 37℃孵育 5 分钟左右
7. 立即测定各孔的化学发光值
8. 结果计算
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文献和实验大鼠磷酸化蛋白激酶C （P-PKC ）酶联免疫分析 试剂盒使用说明书 本试剂仅供研究使用 目的：本试剂盒用于测定大鼠血清，血浆，细胞上清及相关液体样本中磷酸化蛋白激酶C （P-PKC ）的含量。 实验原理： 本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中大鼠磷酸化蛋白激酶 C （ P-PKC ）水平。用纯化的大鼠磷酸化蛋白激酶 C （ P-PKC ）抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入磷酸化蛋白
检测P—ERK，P--P38、P-JNK 需要血清饥饿24h吗？？ 3-24h都有可能,看本底啥时候降到最低来决定. 3还有加药怎么加啊？？做PCR都是用阻断剂孵育1h然后加TGF，WB我都是要在15min、30min、60min提蛋白检测。请问加药该如何加，是直接把TGF和阻断剂混匀加嘛？？还是也孵育1h然后加TGF在上述时间提蛋白？？ 先阻断1h,然后加刺激(没有阻断剂),建议也加上5分钟的,很多时候磷酸化甚至2分钟就开始了. 60min又回复到本底了
， 磷酸化蛋白质的量增加通常伴随着非磷酸化蛋白质的降低。如果在蛋白质提取过程中蛋白质有一部分丢失，磷酸化和非磷酸化蛋白质之间的比例则可能被改变，会导致数据偏差。 以下数据使用两种不同的蛋白质提取方法（SD-001，Invent Biotech, USA 基于柱式法的蛋白质提取试剂盒与 RIPA 缓冲液，未公开的数据）比较 p-stat-3 和 p-56 的磷酸化模式，（G.Szanda， NIH.NIAAA / LPS，USA）。结果表明，对于 stat3 的磷酸化模式，处理（T）和基线水平（NT
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