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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
密封干燥保存
- 保质期:
6个月
- 英文名:
6×DNA Loading Buffer DNA
- 库存:
1000
- 供应商:
钰博生物
6×DNA 上样缓冲液用于琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺琼脂糖凝胶电泳前DNA 样本的处理。缓冲液组分经过优化,其中的染料溶液包括指示剂溴酚蓝和二甲苯青 FF,电泳时可肉眼监控DNA 的迁移。甘油确保样本在点样孔底部聚集;EDTA结合二价金属离子并抑制金属离子依赖性核酸酶。
6×DNA 上样缓冲液包括的各组分:30mM EDTA、36%(v/v) Glycerol、0.05%(w/v) Xylene Cyanol FF、0.05%(w/v) Bromophenol Blue。
6×DNA Loading Buffer DNA上样缓冲液运输与保存方法
室温运输。
4 ºC可保存12个月,-20 ºC可长期保存。
6×DNA Loading Buffer DNA上样缓冲液使用方法
1) 将1倍体积的6×DNA 上样缓冲液加入5倍体积的DNA样本中。
2) 充分混匀、短暂离心后上样。
染料迁移速率(1 %琼脂糖,TAE或TBE)
二甲苯青FF:
TAE: 4160 bp;TBE: 3030 bp
溴酚蓝:
TAE: 370 bp;TBE: 220 bp
注意事项
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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文献和实验【求助】提质粒后,跑电泳,用10乘Loading Buffer 还是6乘Loading Buffer?
ilovelc999 请问各位,提质粒后,用20微升TE溶解,然后进行电泳,应该用10乘Loading Buffer 还是用6乘Loading Buffer?另外Buffer与质粒溶液一般应以什么比例混合好呢?多谢各位啦! 纯属菜鸟 10乘 5:1的比例 质粒5 肥宝 我是用6X的,1:5,质粒5,不过也没那么严格,一般也就点个小点估计1ul lihuijin017
问:新买了GelRed,比较贵,打算用节约的方法来使用,也就是把GelRed预混在上样缓冲液里,和样品混合后上样电泳。因此想请教一下有经验的站友: 1 假定使用6X上样缓冲液,应该以多大比例混合GelRed? 2 预混GelRed的上样缓冲液与核酸样品混合后,需要孵育一段时间还是可以直接上样? 3 预混在上样缓冲液中的GelRed是否稳定,是否可以长期存放,以及存放条件是室温,4度
一、实验目的 1 明确提取液的配制原理 2 通过对提取液的配制,掌握提取液中各 试剂 在提取中的作用。二、实验原理 DNA 是遗传物质, 植物DNA 的提取是植物基因工程的基础。通常要求所提取的DNA 要有理想的纯度,足够完整,无断裂降解,提取过程尽量少使用有毒化学品等。为了达到上述要求,已报道了不少提取植物DNA 的方法,归纳起来,主要有CTAB 法、SDS法和碱提取法。DNA分子是分子
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