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T-2毒素ELISA试剂盒 96 Tests

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  • 2025年07月11日
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    T-2毒素ELISA试剂盒 96 Tests

    T-2毒素是由多种真菌,主要是三线镰刀菌产生的单端孢霉烯族化合物(trichothecenesTS)之一。它广泛分布于自然界,是常见的污染田间作物和库存谷物的主要毒素,对人、畜危害较大。T-2毒素主要作用于细胞分裂旺盛的组织器官,如胸腺、骨髓、肝、脾、淋巴结、生殖腺及胃肠粘膜等,抑制这些器官细胞蛋白质和DNA合成。此外,还发现该毒素可引起淋巴细胞中DNA单链的断裂。T-2毒素还可作用于氧化磷酸化的多个部位而引起线粒体呼吸抑制。

    检测样品:

    上海甄准生物提供T-2毒素ELISA试剂盒具有高灵敏度检测系统,特别适合于定量检测谷物、啤酒、牛奶和肉中T-2毒素污染物。

    产品特点:

    灵敏度:0.9 –11.7 ppb

    回收率(加样样品)93-115%

    培养时间:20min

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    规格

    ZZKT2-E01

    T-2毒素ELISA试剂盒

    T-2 Toxin ELISA Kit

    96 Tests

    检测原理:

    上海甄准生物提供的T-2毒素检测试剂盒是酶联免疫检测方法。抗体结合蛋白包被在微孔板的表面。T-2毒素含有样品或标准品和T-2毒素过氧化物酶共轭物和检测T-2毒素抗体加到微孔板的孔中。共轭物和样品/标准品中T-2毒素竞争抗体位点。同时抗T-2毒素抗体连接到包被的抗体结合蛋白在室温下培养10分钟后,稀溶液洗涤将微孔板除去未结合的物质。加入底物溶液并培养10分钟,直到变蓝色。加入终止液抑制显色反应,颜色变为黄色。在450nm处检测黄色吸光度。T-2毒素的浓度与测试样品的颜色强度直接成比例。

    盒子包含试剂:

    试剂盒使用96次。储存在2-8°C

    112*8微孔板,包被抗体结合蛋白

    2 T-2毒素标准品(0, 0.5, 2.5, 10, 25, 50 ng/mL)6 vials ,每瓶1.0 ml,红色,即用型。

    3、抗T-2毒素抗体(rabbit)6ml,红色,即用型。

    4Conjugate (T-2 Toxin-Peroxidase):6mL,红色,即用型。

    5、底物溶液(TMB)15ml 预染红色 即用型。

    6、终止液(0.5 M H2SO4): 15 mL,即用型。

    7、样品稀释液(PBS): 2 x 60 mL,即用型。

    8、洗涤液(PBS + Tween 20): 60 mL 10x浓缩液。稀释1+9蒸馏水。稀释液保存在4°C,至少可保存1周。如果冷藏结晶过程中沉淀,浓缩物应加热至3715分钟。

    9、塑料袋储存未使用微孔板

    10、操作手册。

    示例标准值:

    下表是示例的典型的标准曲线。计算值是0ng/ml标准品的吸光度。这些值仅是示例。

    T-2毒素 (ng/mL)

    % binding of 0 ng/mL

    0

    100

    0.5

    85

    2.5

    62

    10

    35

    25

    20

    50

    13


    性能参数:

    1、 灵敏度

    检测限(LOD):0.3ng/ml.

    定量极限(LOQ):0.5ng/ml.

    由于样品基质多样性和空白影响,结果低于LODLOQ,认为阴性的

    2、精确度

    内部分析精确度

    3-8%

    交互分析精确度

    9-11%

    3、线性度

    稀释样品线性度:86-107%.

    References

    1. Schwake-Anduschus C, et al. (2010) – Occur-rence of Fusarium T-2 and HT-2 toxins in oats from cultivar studies in Germany and degradation of the toxins during grain cleaning treatment and food processing. Food Addit Contam, 27(9):1253-60

    2. Kankkunen P, et al. (2009) – Trichothecene my-cotoxins activate inflammatory response in hu-man macrophages. J Immunol, 182(10):6418-25

    3. Yoshizawa T, et al. (2004) – A practical method for measuring Deoxynivalenol, Nivalenol, and T-2 + HT-2 Toxin in foods by an enzyme-linke im-munosorbent assay using monoclonal antibod-ies. Biosc Biot Biochem, 68(10):2076-85

    4. Chu F S, et al. (1986) – Improved method for production of antibodies against t-2 toxin and di-acetoxyscirpenol in rabbits. Appl Env Microb, 51(1):132-37

    5. Ohtani K, et al. (1988) – Improved preparation of T-2 toxin-protein conjugates. Toxicon, 26(11):1107-11

    6. Katja Bernhardine (2008) – Entwicklung und Validierung von Enzymimmuntests zum Nach-weis von T-2 Toxin und HT-2 Toxin sowie Vor-kommen dieser Mykotoxine in Lebensmitteln des deutschen Marktes. Dissertation, Tierärztliche Fakultät München

    7. Suproniene S, et al. (2010) – Distribution of trichothecene and zearalenone producing fusa-rium species in grain of different cereal species and cultivars grown under organic farming condi-tions in Lithuania. Ann Agric Environ Med, 17:79-86

    8. Barthel J, et al. (2012) – Occurrence of type A, B and D trichothecenes in barley and barley prod-ucts from the Bavarian market. Mycotoxin Res, 28(2)_97-106

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