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Percoll细胞分离液

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  • 2026年01月04日
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      一年以上

    • 英文名

      Percoll

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    • 供应商

      武汉科昊佳生物科技有限公司

    • CAS号

      ******

    • 保存条件

      4摄氏度低温保存

    • 规格

      1L

    Percoll不连续密度梯度沉淀法分离纯化淋巴细胞和淋巴母细胞
    (一) 原理
      Percoll是一种包有乙烯吡咯烷酮的硅胶颗粒。渗透压很低(<20mosm/kg H2O), 粘度也很小,可形成高达1.3g/ml密度,采用预先形成的密度梯度时可在低离心力(200~1000g)于数分至数十分钟内达到满意的细胞分离结果。由于Percoll扩散常数低,所形成的梯度十分稳定。此外,Percoll不穿透生物膜,对细胞无毒害,因此广泛用于分离细胞、亚细胞成分、细菌及病毒,还可将受损细胞及其碎片与完好的活细胞分离。
    (二)操作方法及注意事项
     1.不同浓度(密度)Percoll溶液的制备: 先用9份Percoll与1份8.5% NaCl或1.5MPBS混合达到生理性渗透压,然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15M PBS)稀释到所需浓度。
    Percoll浓度(%)  70    60    50    40    30     20
      比重g/ml    1.090 1.077 1.067 1.056 1.043 1.031
    2.不连续密度梯度Percoll层的制备: 先将试管壁用牛血清湿润,除去多余血清,这种预处理可使逐层叠加的Percoll液平稳沿管壁流下,使形成满意的界面。在制备过程中一般用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置,有时相邻两层Percoll比重相差不大时,可将Percoll液放入注射器中,小针头斜面紧贴管壁,任其自然慢慢流下。
    3.装样:样品体积和细胞浓度根据不同细胞而异,一般加样体积不宜过大,细胞浓度也不可过高,否则会影响细胞的分离和回收。
    4.离心:一般采用离心力为400g,时间20~25min。由于多层Percoll之间密度差别不大,因此离心机加速、降速时要慢,要平稳。
    5.取样:当所要分离的细胞绝大部分在两层的界面时,可逐层去除Percoll液后收集界面部位的细胞;有时大部分细胞位于Percoll层中,则需要逐层收集。收获含有Percoll液的细胞经2次洗涤后可供培养或检测用。
    (三)分离纯化细胞举例
    1.富含NK活性大颗粒淋巴细胞(LGL)的纯化:按顺序由下向上逐层加50%、47.5%、45%、42.5%和40%五种不同密度的Percoll,如用10ml试管(或塑料管)分离,每层Percoll约1.2~1.5ml,初步从外周血中分离的PBMC细胞1×108悬于1ml培基中,按要求装样、离心和取样。一般富含NK杀伤活性的LGL细胞位于42.5%与45%Percoll界面以及上下二层的Percoll液中。
    2.纯化淋巴母细胞和除去死细胞:分别叠加50%和30%Percoll液。收取经PHA(或其它抗原、有丝分裂原)刺激PBMC,或含有较高比例异型的PBMC(如肾综合征出血热患者),按要求装样、离心和取样。位于管底的淋巴细胞为小淋巴细胞;两层Percoll之间为淋巴母细胞,纯度和回收率在80%以上,位于30%Percoll表面是死细胞。收获淋巴母细胞可进行表型、结构以及功能的研究。
    (四) 人不同血细胞的漂浮密度

    表   人不同血细胞的漂浮密度
    ──────────────┬──────────────────
       细 胞   漂浮密度    │ 细 胞       漂浮密度
    ──────────────┼──────────────────
       红细胞  1.09-1.11     │淋巴细胞       1.052-1.077
       粒细胞           │ B淋巴细胞      1.062-1.075
       嗜酸性  1.09-1.095    │ T淋巴细胞      1.065-1.077
       嗜中性  1.080-1.085    │ 淋巴母细胞     1.065-1.077
       单核细胞 1.050-1.066    │自然杀伤细胞     1.050-1.070
       血小板  1.030-1.060    │
       ──────────────┴──────────────────
    (五)问与答 
    问:请问percoll连续梯度怎么配制?比如15%---75%的percoll连续梯度?
    答:根据你需要的具体密度梯度决定的,根据要分离的不同细胞种类,数量等等,也有用原液配的。也有用80%配的,不一定的。另外,percoll本身是低渗透压的,要用高渗透压溶液配成生理等渗透压溶液,然后使用,不然,细胞容易破裂。一般是先用9份Percoll与1份8.5% NaCl或1.5MPBS混合达到生理性渗透压,然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15M PBS)稀释到所需浓度。即取Percoll原液与10倍浓缩的PBS以9:1的比例混合,此时溶液 为100% Percoll,比重是1.127,毫克分子渗透压浓度为290mOsmol/kg
    Percoll浓度(%) 70 60 50 40 30 20
    比重g/ml 1.090 1.077 1.067 1.056 1.043 1.031

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    • 配制percoll细胞分离液

      Percoll浓度(%)  70    60    50    40    30     20 比重g/ml   1.090 1.077 1.067 1.056 1.043 1.031 2.  不连续密度梯度Percoll层的制备: 先将试管壁用牛血清湿润,除去多余血清,这种预处理可使逐层叠加的Percoll

    • Percoll细胞分离液的使用方法

      试剂   1. 小牛血清 2. Percoll细胞分离液 3. 8.5%NaCl 4. 1.5MPBS 实验设备   1. 高速冷冻离心机(3K-30) 2. 4℃、-20℃冰箱 3. 长针头注射器 4. 1.5mL和10mL离心管 实验材料   PBMC细胞 实验步骤   1. 不同

    • 从单个核细胞中分离出T细胞

      3)将细胞悬液小心加在半量淋巴细胞分离液上,室温中水平离心500×g 20分钟。 4)吸弃上层无细胞液体,将细胞培养 和淋巴细胞分离液交界面的细胞和约85%的淋巴细胞分离液吸出,置另一离心管中。交界面的即E-细胞,立即向该细胞悬液中加等量洗涤液,离心500×g 10分钟,去上清液;再用洗涤液同样洗涤2次,除去淋巴细胞分离液,以备进一步分离B淋巴细胞和单核细胞。 5)分离E+细胞:吸出剩余液体,用10倍量Gey’s悬浮沉淀细胞1~2分钟,低渗溶解红细胞。立即加入同量两倍

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