15ML离心管，带架，货号：430790

类器官培养与应用——血管类器官

%、且大部分无分化的状态时，吸出培养基。 3、向 hPSCs 中加入 0.5 mM EDTA 洗涤细胞一次。 4、吸去 EDTA 溶液，每孔加入 0.6ml Accutase，并将培养皿放置在 37℃ 解离约 3-5min，直到所有的细胞变圆。 5、向每个孔中加入 5ml 的 hPSCs 培养基，并用 0.1% 台盼蓝进行染色计数。 6、将所有细胞转移至 15ml 离心管中，室温下 300g 离心 3min，收集沉淀细胞。6 孔板中每孔接种 2×105 个细胞，加入预热的 3ml hPSCs 培养

肿瘤类器官免疫荧光实验总是结果不理想？这份指南请收藏

近年来，肿瘤类器官正迅速成为肿瘤研究、药物开发以及精准医疗领域的重要模型。相比传统二维肿瘤细胞系，类器官能够更真实地模拟患者肿瘤组织的结构与异质性，因此被广泛应用于药物筛选、机制研究和个体化治疗评估。然而，对于许多研究人员而言，如何获得高质量的肿瘤类器官免疫荧光图像仍然是一项挑战。 今天，我们结合赛默飞新的实验方案，带您系统了解肿瘤类器官免疫荧光样本制备的关键步骤与实验技巧。   为什么选择肿瘤类器官？ 肿瘤类器官（Tumoroids），又称患者来源肿瘤

用 CD3/CD28 做好 T 细胞激活与扩增

细胞筛网置于培养皿中，取小鼠脾脏放置于筛网中，加入 5ml 达优小鼠淋巴细胞分离液，对脾脏轻轻进行研磨（注：此步操作要快，避免分离液蒸发）； 2. 把悬有脾脏细胞的的分离液立即转移至 15ml 离心管中，随后在分离液上层轻轻覆盖 500-1000μl 的 RPMI1640 培养基（保持分离液与培养基分界明显）； 3. 室温，水平转子 800g 离心 30 分钟，设置离心机为缓升缓降； 4. 离心结束后吸出淋巴细胞层（白膜层），加入 10ml RPMI1640 洗涤一遍细胞，250g 离心 10