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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
99
- 保质期:
1年
- 供应商:
香港吉斯恩贝国际贸易有限公司
- 保存条件:
2~8℃保存
- 规格:
60gels/125gels
| 规格: | 60gels | 产品价格: | ¥241.6 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 125gels | 产品价格: | ¥413.6 |
【牌 号】JF0170
【英文名称】SDS-PAGE gradient gel one-step preparation kit
【规 格】试用装规格 10gels,60 gels,125 gels(0.75mm 胶)
【产品组成】
【产品简介】
本试剂盒提供一步法配制 SDS-PAGE 类梯度凝胶所需全部试剂,用户只需自备制胶器具和蒸馏水,即可便捷完成具有梯度分离效果的下层胶与上层胶的连续灌注,无需液封,操作高效。
特点:
无需优选浓度,单次灌胶即可有效分离 10–250 kDa 广泛分子量范围的蛋白;
采用 A 液、B 液加等比例稀释液 X 的 3 试剂模式,简化类梯度凝胶配制流程;
预添加替代物,无挥发异味,操作更安全;
电泳后蛋白条带清晰、锐利,大小分子均获良好分离;
含快速电泳液干粉,全面提升实验效率。
【保存】
2~8°C 保存,有效期 12 个月;SDS-PAGE 快速电泳液干粉可常温保存,有效期 36 个月。
APS 改良型促凝剂粉末需现用现配:每支加 1 mL 蒸馏水配成 10%溶液,-20℃可保存 2 个月,4℃限 2 周内使用;
【使用方法】
1、选择浓度:本试剂盒配制的梯度凝胶可有效分离 10-250 kDa 分子量范围的蛋白,无需根据蛋白分子量预先选择凝胶浓度。传统凝胶浓度与分离范围对应关系可参考【参考附表 1】。
2、配置工作液:
将所有试剂恢复至室温;
根据目标凝胶厚度及配制体积,按照【参考附表 2】取所需体积下层胶 A 液和上层胶 B 液;
向 A 液和 B 液中分别加入等体积的稀释液 X,混匀;
向上一步的两种混合液中分别加入 10% APS 改良型促凝剂溶液(加入比例为 1:100),充分混匀。
3、灌胶:
先将混合好的下层胶工作液(A 液+X 液+APS)注入制胶玻璃板中;
紧随其后,缓慢加入上层胶工作液(B 液+X 液+APS),使其与下层胶自然形成梯度过渡界面,不需额外液封;
注:灌胶时需缓慢操作,防止两层凝胶混合。若操作不熟练,可在灌注完下层胶后,用乙醇或纯水进行液封,待下层胶凝固后再配置并灌注上层胶。
轻轻插入梳齿,避免气泡;待胶凝固后(约 20 min),拔取梳齿即可用于电泳。
4、电泳:
配置电泳液:取一袋粉末,加入 1L 去离子水或者蒸馏水,充分溶解后即可。 推荐电泳条件:推荐 150V-250V 恒压电泳,25-45 分钟即可完成电泳,适用于 Mini-PROTEAN 等常规模块胶系统。
注:回收的电泳液可重复使用 1-2 次。如观察到导电性下降或条带弥散,应更换新鲜电泳液。为取得最佳的电泳效果,请新鲜配置。 【注意事项】
本试剂盒适用于 0.75/1.0/1.5 mm 厚度凝胶,约可配制 60–125 块(0.75 mm)。

注:以上数据基于伯乐(Bio-Rad) Mini-PROTEAN 等标准制胶器计算,实际数量可能因具体操作、仪器型号及实验习惯略有浮动。
溶液中如有极少量漂浮物属正常现象,摇匀后可正常使用。
使用前所有试剂需恢复至室温。推荐在 22–25°C 环境下操作,凝胶通常在 20 分钟左右凝固。配合本公司快速电泳液(JF7414),从配胶到转膜完成仅需约 1.5 小时。
下层胶与上层胶工作液的体积比推荐为 2:5,也可根据实际分离需求尝试 3:4 等其他比例。
部分品牌电泳仪使用过程中会产生热量,可适当调低电压进行电泳。
插入梳子时请缓慢操作,避免气泡影响上样孔成型。
本品仅供科研使用,严禁用于临床、食品、药品等领域。
为了您的安全和健康,操作时请穿戴实验服、手套等防护用具。避免与皮肤、眼睛接触,若误触需立即用水冲洗。
【参考附表 1】
传统凝胶浓度与分离范围对应关系图

【参考附表 2】

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文献和实验liteng1117 求助: 构建好了重组腺病毒进行蛋白表达,分子量是14kd,5%的浓缩胶70v,12%,或15%的分离胶110v,跑90min。湿转:100v,90min。封闭用5%的脱脂奶粉,封闭3h(因为背景深,以为封闭久会好些)。一抗1:3000,4度过夜,二抗1:5000,孵育1h,洗膜都是用TBST漂洗15min ×4次。但是显影后背景特别深,虽然可以看见目的条带,但还是有一些非特异性的条带出现,不知道是封闭出问题还是一抗浓度过高。
泳吧。4、在我用SDS-PAGE胶进行电泳过程中,一直以来都是按照说明书配制压缩胶和分离胶的,并且在说明书中,以配置2块胶为例,分离胶说明书中是让配置10ml,压缩胶是3ml。我一直以为是对应关系,在这次大悟之后我发现分离和压缩完全不是一对一对应关系,人家只是给了你配置这么多体积胶的配方而已,虽然在一个纵列上,但是绝不是对应关系(我确实才觉悟,高手轻鄙视哈)。5、接上一条经验,所以我在配胶过程中,下层分离胶配制了10ml,但是实际上每块玻板里面只加了大概3.5ml吧,也就是整个玻板高度的60-70%的样子。然后压缩
【求助】180KD的膜蛋白western转膜条件怎样?(湿转)
zhywang4072 鄙人现在做一180KD的蛋白,之前转PVDF膜用的是100v两个半小时,预染marker转得很漂亮,内参也很不错,但是目标蛋白条带却没有,请教各位大侠,这是什么原因?还有诸位大蛋白转膜时候条件怎样?我用的是湿转,谢谢 wodezxn 我觉得100V2h肯定是足够了,没转上应该是你目的蛋白的问题,可能是蛋白表达量太少或者你提蛋白的时间有问题。 zhibinx2007











