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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 英文名:
MLO-Y4
- 库存:
100万细胞数
- 供应商:
上海安序达生物科技有限公司
- 细胞类型:
科研
- 组织来源:
器官
- 物种来源:
人或动物
- 细胞形态:
正常
- 是否是肿瘤细胞:
详见说明
- 器官来源:
详见说明
- 运输方式:
顺丰运输
- 年限:
数年
- 生长状态:
贴壁生长
- 规格:
25T
请收到细胞后,先在培养箱静置3-5小时后,再在倒置镜下(好是在4X物镜)观察整个细胞生长情况。 (一)如果细胞生长愈合度低于70%且细胞未大面积脱落,用75%酒精喷洒整个瓶消毒后放到超菌台内,严格无菌操作,打开细胞培养瓶,吸出旧培养液,换8-10ml新鲜培养液后继续培养。(二)如果细胞大面积脱落,将细胞继续静置过夜,期间可不进行处理。等待第二天观察细胞,如果细胞大部分恢复贴壁,可参照(一或三处理);如果细胞少部分贴壁,仍然大部分细胞漂浮,可将细胞悬液通过离心收集,用新鲜完全培养基重新接种至新的培养瓶中,旧培养瓶中的细胞更换新的完全培养基继续培养。
如果细胞愈合度已经超过75%,即可进行传代培养。具体步骤如下: 1. 弃去培养液,用PBS(不含钙,镁离子)洗1-2次。 2. 加0.7ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)(依据细胞消化难易程度可适当增减)于培养瓶中,后轻轻摇晃让消化液充分接触细胞,在倒置显微镜下观察细胞消化情况,期间间隔5-10s用力拍打瓶壁两侧,等细胞大部分(大于50%)能拍打下来时,可将培养瓶转移至无菌生物安全柜中。 3. 轻轻打匀后吸出一半,分到新的培养瓶中,按6-8ml/瓶补加完全培养基。如果没有特别说明,收到细胞后的次传代一般是一传二。
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文献和实验Studying Osteocyte Function Using the Cell Lines MLO-Y4 and MLO-A5
We describe the culture and use of MLO-Y4 cells in studies of gene expression, response to fluid flow, and dendrite growth. We also describe how to use the MLO-A5 cells as a model of osteoblast to osteocyte �differentiation and how to study
小鼠骨髓单细胞悬液制备流程 颈椎脱臼法处死小鼠,放在75%酒精中浸泡5 min。提前于超净台上准备一个消毒托盘(可用无菌口罩或者用浸满酒精的纱布代替),取出小鼠并铺于消毒托盘上。 在无菌环境下取小鼠的后肢骨。用眼科镊小心捏起小鼠两髋关节之间的腹部皮肤,用眼科剪小心剪开,并分离两下肢的皮肤。将皮肤往下在脚踝处剪断,往上在髋关节处剪断,游离出小鼠的两条后肢。 小心剥离肌肉(肌肉两端的白色坚韧组织为肌腱,可以顺着肌腱分离,肌肉主要靠肌腱与关节相连),分别剪下Femurs(股骨)和Tibias(胫骨
提到单细胞测序,相信各位小伙伴们都很熟悉,真是又爱又恨的一个技术啊,爱它既能帮助我们解决很多科研问题,同时也是对它的价格暗暗咬牙;大家莫慌,今天小编就给大家一个神器——单细胞混样测序,让大家用小经费就能轻轻松松发表5分左右的文章。 单细胞Mix(混样)测序产品是基于10x Genomics和BD Rhapsody平台,利用寡核苷酸偶联的抗体孵育不同的样本,为不同的样本标记上不同的标签,然后将多个样本混合在一起,按照单一样本文库制备的流程,进行一次建库操作,然后上机测序,实现多样本混样
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