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- 2026年04月26日
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- 详细信息
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1年
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有
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环亚生物科技有限公司
HLS2 超长DNA片段回收
—超长DNA片段回收： 50kb-2Mb; 靶向长片段获取; 一步法提取线粒体DNA
• Sage Science 公司
位于美国马萨诸塞州，2010年成立，专注于核酸领域的样品制备
全球超过3000家客户的认可，国内装机数量400台左右
2万篇文献中应用，包括众多Nature、 Science、 Cell系列的文章
DNA片段筛选回收领域的行业金标准
• HLS2 超长DNA片段回收
整合了脉冲场电泳，直接从核酸样品中完成DNA超大片段的分选回收
回收范围：50kb-2Mb DNA;
用于Nanopore、华大、齐碳、普译等超长测序（Ultra long Sequencing）文库构建
用于CATCH技术获取的上百kb靶向克隆基因组片段回收
技术原理
- 上样后，首先进行横向脉冲场电泳，将大片段DNA进行分离
- 然后，机器自动调整停止横向电泳，开启纵向电泳，将DNA样本电泳至回收孔中
- 回收结束后，使用移液器将回收孔中的样本吸走，进行下一步实验
产品特点
- 超长DNA片段回收:50kb-2Mb
- 靶向长片段获取:联合CRISPR-Cas9基因编辑技术，获取长片段完整基因，长度可从50kb-400kb
- 线粒体DNA回收:一步法提取线粒体DNA，1.25小时进行提取和片段分离电泳，1.5小时完成回收洗脱
应用方向
典型案例
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案例1： Sage HLS2 用于超长测序（Ultra long Sequencing）文库构建，只保留50kb以上的DNA，提高Reads N50长度，降低测序成本
50kb High Pass超长基因组，去除50kb以下DNA |
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案例2： 经过SageHLS2自动化片段筛选，建库后Nanopore测序在单个cell上Reads N50可达143.3 kb
Reads N50可达143.3 kb（数据来源：希望组官方公众号） |
代表客户
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文献和实验发表文献
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1.Eveleigh, Robert JM, et al. "Finding an optimal sequencing strategy to detect short and long genetic variants in a human genome." bioRxiv (2025): 2025-05. 2.Liu, Xin, et al. "Telomere‐to‐telomere reference genome reveals subgenome divergence and large structural variants in Capsella bursa‐pastoris (Brassicaceae)." Biological Diversity 2.1 (2025): 28-38. 3.Fang, Zhenyu, et al. "Experimental insights into genome reconstruction driven by horizontal transfer of supernumerary chromosomes in Magnaporthe oryzae." New Phytologist 248.1 (2025): 140-156. 4.Yadav, Hemant Kumar, et al. "Telomere‐to‐telomere genome assembly of linseed (Linum usitatissimum L.) for functional genomics and accelerated genetic improvement." Plant Biotechnology Journal (2025). 5.Wen, Huaming, et al. "TRFill: synergistic use of HiFi and Hi-C sequencing enables accurate assembly of tandem repeats for population-level analysis." Genome biology 26.1 (2025): 227. 6.Xia, Zhiqiang, et al. "Pan-genome and haplotype map of cassava cultivars and wild ancestors provide insights into its adaptive evolution and domestication." Molecular Plant 18.6 (2025): 1047-1071. 7.Zhou, Bo, et al. "Resolving the 22q11. 2 deletion using CTLR-Seq reveals chromosomal rearrangement mechanisms and individual variance in breakpoints." Proceedings of the National Academy of Sciences 121.31 (2024): e2322834121. 8.Cai, Yudong, et al. "Genome sequencing of ‘Fuji’apple clonal varieties reveals genetic mechanism of the spur-type morphology." Nature communications 15.1 (2024): 10082. 9.Gao, Shenghan, et al. "The centromere landscapes of four karyotypically diverse Papaver species provide insights into chromosome evolution and speciation." Cell Genomics 4.8 (2024). 10.Yang, Chentao, et al. "The complete and fully-phased diploid genome of a male Han Chinese." Cell Research 33.10 (2023): 745-761. |
6，7步骤1次。 9、于50 ℃烘箱烘干。 10、加10ul的去离子水用枪头打匀，65 oC水浴15分钟，间断混匀。 离心10 s,把上清转移到另外洁净的离心管中 跑胶检测回收效率 注意事项 * 4----8步均在冰上操作，防止解吸附，silica只在低温下对DNA有吸附作用。 * NEW Buffer:（100ml） 去离子水加至100ml.（-20度保存） * Silica配法见：
1. 紫外灯下仔细切下含待回收DNA的胶条，将切下的胶条（小于0.6g）捣碎，置于1.5ml离心管中； 2. 加入等体积的Tris-HCl饱和酚（pH 7.6），振荡混匀； 3. -20℃放置5-10min； 4. 4℃离心10000g×5min，上层液转移置另一离心管中； 5. 加入1/4体积H2O于含胶的离心管中，振荡混匀； 6. -20℃，放置5-10min； 7. 4℃离心10000g×5min，合并上清液； 8. 用等体积酚/氯仿、氯仿分别抽提一次
相关专题 【原理】 在构建重组 DNA分子时，为了提高重组效率，载体DNA的酶切片段，特别是两种酶切的载体DNA片段、目的基因酶切的DNA片段等，都需要在酶切后进一步分离、纯化与回收。另外在检测重组DNA的分子杂交技术中，要制备DNA探针，也往往涉及要先分离回收DNA片段。 【操作】 1.酶切之后进行琼脂 糖凝胶电泳,泳毕后在紫外灯下检查目的片段所在位置,并将其凝胶块切下,将凝胶条置于"V"字槽内负极端贮
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