氟化锶,7783-48-4，450030-10G

全新发布：外泌体样本收集指南

。 4、低温原则 所取样本离体后，应尽快置于干冰或 -80℃ 冰箱中，并保证在实验前始终处于 -70℃ 以下， 以避免外泌体降解。 二、样本制备指南 1、细胞上清 1) 细胞在正常含有血清的培养基中培养一定时间，贴壁细胞密度在 70%-80%，悬浮细胞密度在 60%-70%； 2) 对于贴壁细胞，去除原有培养基，加入适量的 PBS 缓冲液冲洗一次，彻底去除血清；对于悬浮细胞，300 g ，4℃，10 min 收集细胞，然后换为新的不含外泌体的培养基或者无血清替代培养基继续培养 24-48 h， 根据细胞

细胞上清液提取常见问题解析

。 4、培养细胞时，如何去除血清来源的外泌体？ 多数情况下，细胞在体外培养时需要血清，而血清中一般都含有外泌体，为避免血清对细胞外泌体的污染，可采用以下两种方法： 将细胞培养用的血清通过 1×105g 超速离心 >10 h 以去除血清外泌体； 选择无血清完全替代培养基进行细胞培养。 5、无外泌体血清（或者外泌体专用培养基）在什么时候使用？ 使用无外泌体血清培养基：细胞在正常含血清的培养基中培养一定的时间后，细胞汇合度在60% - 70% 时，移去原有含血清的培养基，换成新鲜的无外泌体血清培养基，继续

类器官培养与应用——卵巢癌类器官

，促进解离。 4、向悬浮液中加入 50μl 脱氧核糖核酸酶（2mg / ml），并在 20°C-22°C 下孵育1min。 5、加入 8ml 预冷的 DMEM/F12（含 10%FBS）终止消化。 6、将悬浮液经过 70μm 细胞筛网过滤，收集解离的细胞。 7、将过滤的细胞悬液在 4℃ 条件下 220g 离心 5min。 8、用 1mlDMEM / F12（20°C-22°C）冲洗细胞一次，离心收集细胞沉淀后，加入500μl DMEM / F12（20°C-22°C）重悬细胞，并在细胞计数后，将细胞