AffiniPure® Rabbit Anti-His Ta

对比 Strep-tag 与 His-tag 系统异同点？

质，小分子或是金属。当融合有亲和标签的蛋白通过标签-配体作用结合再层析基质上时，通过洗杂步骤，即可去除掉其他的细胞成分。 为了洗脱所需要的蛋白质，通过改变缓冲液的条件，如pH，或通过竞争亲和标签和配体连接的方法来进行。 但怎样的纯化是较为成功的呢？仅达到所需的质量量级，如毫克级（或克级）即可满足吗？ 这些并不简单。质在蛋白纯化中同样尤为重要，比如，就蛋白的生物活性和纯度而言，通常会有所要求。   以下我们来讨论并且比较2种技术： His-tag系统和Strep-tag®系统，都使用了亲和层析法来纯化

Strep-tag 0 基础如何入门？

Strep-tag®技术是亲和纯化重组蛋白的常用工具，它基于自然界中最强的非共价相互作用之一，即生物素与链霉亲和素的相互作用。该纯化系统的突出特点是纯化过程温和、目的蛋白纯度高、特异性强、兼容多种表达系统，对于有挑战性蛋白的纯化十分有帮助，因此近些年来脱颖而出。   本文将从以下方面介绍Strep-tag®技术： 标签介绍 纯化原理 标签-配体 纯化步骤 系统特点 标签介绍 目前有2种广泛使用的Strep标签： 它们分别是： Strep-tag®II 8 aa小标签(Trp-Ser

干货 | CUT and Tag 让 ChIP-Seq更简单高效！

说明书推荐的反应体系进行 CUT&Tag 实验；其中，pG-Tn5 转座子使用的终浓度为 0.04μM ，一抗为 H3K27me3（CST，#9733），二抗为 Goat anti Rabbit（Bioworld，#BS13271）。 A、文库峰型检测 使用 Agilent 2100 Bioanalyzer 进行文库分布检测。 图 2. 使用 TD901 构建 100 cells CUT&Tag 文库峰型图 图 3. 使用 TD901 构建 10,000 cells CUT&Tag