4,7-二氯呋喃[2,3-d]吡啶嗪 4,7-Dichlo

金开瑞生物超滤离心管（15 mL）全新上市|蛋白浓缩· 脱盐 · 缓冲液置换，一根搞定

损。 04 避坑要点 ▪沉淀必先去除：蛋白聚集体会不可逆堵膜，流速归零即报废；   ▪起始浓度≥ 1 mg/mL：过低会因膜吸附导致回收率骤降；浓缩倍数建议≤ 20×； ▪膜不可晾干：干燥后孔径改变、基本报废，暂不用须保湿 4 ℃ 存放； ▪非无菌产品：严禁高温高压灭菌、次氯-酸-钠消毒；表面消毒仅限 70% 乙醇短时处理； ▪高盐（> 500 mM）先稀释：缓冲液 pH 差 ≤ 1，防止蛋白沉淀； ▪一次性使用：科研发表、GMP/GLP 场景禁止复用，珍贵样本

薄层层析溶剂/展开剂/显色剂的选择配制及注意事项

不与待测组分或吸附剂发生化学反应; ⑤沸点适中，黏度较小; ⑥展开后组分斑点圆且集中; ⑦混合溶剂最好用新鲜配制。 三、溶剂极性参数表 环已烷 :-0.2、石油醚(Ⅰ类，30~60℃)、石油醚(Ⅱ类，60~90℃)、正已烷:0.0、甲苯:2.4、二甲苯:2.5、苯:2.7、二氯甲烷:3.1、异丙醇:3.9、正丁醇:3.9、四氢呋喃:4.0、氯仿:4.1、乙醇:4.3、乙酸乙酯:4.4、甲醇:5.1、丙酮:5.1、乙腈:5.8、乙酸:6.0、水:10.2 1、一般来说，弱极性溶剂体系

HPLC基础知识培训教程(四)

柱的清洗溶剂及顺序，作为参考：硅胶柱以正已烷（或庚烷）、二氯甲烷和甲醇依次冲洗，然后再以相反顺序依次冲洗，所有溶剂都必须严格脱水。甲醇能洗去残留的强极性杂质，已烷使硅胶表面重新活化。反相柱以水、甲醇、乙腈、一氯甲烷（或氯仿）依次冲洗，再以相反顺序依次冲洗。如果下一步分析用的流动相不含缓冲液，那么可以省略最后用水冲洗这一步。一氯甲烷能洗去残留的非极性杂质，在甲醇（乙腈）冲洗时重复注射100~200µ；l四氢呋喃数次有助于除去强疏水性杂质。四氢呋喃与乙腈或甲醇的混合溶液能除去类脂。有时也注射二甲