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单细胞测序一般测多少数据量
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单细胞测序一般测多少数据量
单细胞测序的数据量取决于研究目标、样本类型和技术平台的选择。对于常规转录组测序(scRNA-seq),每个细胞通常需要测序50,000–100,000条reads,以确保足够覆盖基因表达谱。例如,10x Genomics平台推荐每个细胞测50,000 reads,而高深度测序(如全长转录本分析)可能需要100,000–200,000 reads/细胞。对于表观基因组测序(如scATAC-seq),由于开放染色质区域信号稀疏,每个细胞通常需要更高的数据量(50,000–100,000 fragments)。在单细胞基因组测序(scWGS)中,由于全基因组覆盖要求,单个细胞可能需要0.1–1X基因组覆盖度(约300,000–3,000,000 reads)。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。
数据量的选择需权衡成本与科学问题。例如,在异质性较高的肿瘤样本中,增加测序深度(如100,000 reads/细胞)可提高稀有细胞亚群的检出率;而在均质性较高的免疫细胞研究中,50,000 reads/细胞可能已足够。近年来,基于微流控或组合索引的高通量平台(如Drop-seq、sci-RNA-seq)可并行处理数万至数百万细胞,但单个细胞的数据量可能较低(10,000–30,000 reads/细胞),需通过算法校正数据稀疏性。此外,多组学联合分析(如CITE-seq、REAP-seq)因同时检测转录组和表面蛋白,需额外增加数据量(约20%–30%)。
单细胞测序一般测多少数据量也受生物信息学分析的影响。例如,UMI(wéiyī分子标识符)技术可减少PCR扩增偏差,允许在较低数据量下准确定量基因表达;而全长转录本测序(如Smart-seq2)因无UMI,需更高深度以区分真实信号与噪音。新兴技术如单细胞长读长测序(scISO-seq)因读长优势,可降低数据量需求(约20,000 reads/细胞),但当前成本较高。
常见问题:
Q1. 单细胞测序一般测多少数据量才能可靠检测低表达基因?
A:低表达基因的检出需更高测序深度,通常建议≥100,000 reads/细胞。研究表明,在50,000 reads/细胞时仅能检测表达量>1 RPM(Reads Per Million)的基因,而100,000 reads/细胞可将灵敏度提升至0.5 RPM以下。
Q2. 单细胞多组学测序(如scRNA-seq + scATAC-seq)如何分配数据量?
A:需根据组学类型调整。例如,转录组占70%–80%(50,000–80,000 reads/细胞),染色质可及性占20%–30%(20,000–30,000 fragments/细胞)。联合分析时,建议优先保证转录组数据量以维持基因表达矩阵的完整性。
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:Buffer、体系、孵育时间、spike-in DNA 量以及建库制备和纯化过程。 图 6:不同细胞量 mESCs 的 uliCUT&RUN 数据结果[4] 将不同细胞量 mESC 的 uliCUT&RUN 数据中的 CTCF 和 H3K4me3 测序结果与已有文献发表的 ChIP-seq 数据进行 read 密度可视化比较,发现 10 个细胞起始量的测序结果可以展现出类似 50 万细胞量的结合位点富集热图。其中 CTCF 的结合区更为狭窄集中,而 H3K4me3 则占据相对宽的区段。 ✦
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/int.亚群与前列腺癌有较好的预后关系;而 cell-cycle 细胞亚群则与前列腺癌预后呈负相关。 Fig.1 上皮细胞与 maker 基因相关性打分情况Fig.2 TCGA 预后关联性分析 (2)单细胞测序发现肿瘤转移潜在机制和微转移灶 在 T 细胞的研究中,我们惊奇的发现,T 细胞竟然表达前列腺癌特异性基因KLK3,深入挖掘分析多种类型的单细胞公共数据库发现 T 细胞均表达相应的肿瘤标记基因的广泛特征。 接下来,以 KLK3 为中心,进行了基因与亚群功能相关性分析、基因共表达网络分析,发现
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