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蛋白和蛋白相互作用的研究方法解析
蛋白和蛋白相互作用(Protein-Protein Interaction, PPI)是细胞生命活动的核心机制之一,涉及信号转导、代谢调控、免疫应答等关键生物学过程。研究蛋白和蛋白相互作用的方法多种多样,涵盖生物化学、生物物理学、细胞生物学和计算生物学等多个领域。这些技术不仅能够揭示蛋白复合物的形成机制,还能为疾病治疗提供潜在的靶点。
传统的蛋白和蛋白相互作用研究方法主要包括酵母双杂交系统(Yeast Two-Hybrid, Y2H)、免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation, Co-IP)和亲和纯化-质谱联用(Affinity Purification-Mass Spectrometry, AP-MS)。酵母双杂交系统利用转录因子的模块化特性,通过报告基因的激活检测蛋白间的结合,适用于大规模筛选相互作用蛋白。免疫共沉淀则依赖抗体特异性捕获目标蛋白及其结合伴侣,结合Western blot验证,具有较高的特异性。亲和纯化-质谱联用技术通过靶蛋白的亲和纯化富集相互作用蛋白,再通过高灵敏度质谱鉴定,能够全面解析蛋白互作网络。
近年来,基于生物物理的方法如表面等离子共振(Surface Plasmon Resonance, SPR)和生物层干涉术(Bio-Layer Interferometry, BLI)在蛋白和蛋白相互作用研究中得到广泛应用。这些技术能够实时监测结合动力学参数(如结合速率常数、解离速率常数和平衡解离常数),为定量分析蛋白相互作用提供了高精度工具。此外,荧光共振能量转移(Fluorescence Resonance Energy Transfer, FRET)和双分子荧光互补(Bimolecular Fluorescence Complementation, BiFC)等技术通过荧光信号的变化直观展示蛋白相互作用的空间和时间动态。
结构生物学方法如X射线晶体学、冷冻电镜(Cryo-EM)和核磁共振(NMR)能够解析蛋白复合物的三维结构,揭示相互作用界面的原子细节。这些技术对于理解蛋白和蛋白相互作用的分子机制至关重要。计算预测方法(如分子对接和机器学习模型)则通过算法模拟蛋白相互作用,辅助实验数据的解读和假设生成。
蛋白和蛋白相互作用的研究方法选择需综合考虑实验目的、样品特性和技术限制。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。
常见问题:
Q1. 如何验证酵母双杂交系统筛选出的蛋白相互作用的真实性?
A:酵母双杂交系统可能存在假阳性结果,需通过正交实验验证,如免疫共沉淀、GST pull-down或体外结合实验(如SPR)。此外,突变关键相互作用位点后观察结合能力的变化可进一步确认特异性。
Q2. 表面等离子共振(SPR)和生物层干涉术(BLI)在蛋白相互作用分析中的主要区别是什么?
A:SPR基于折射率变化检测结合事件,需固定配体在芯片表面,适合高精度动力学分析;BLI通过光干涉信号直接测量生物分子结合,无需流体系统,操作更简便,但灵敏度略低于SPR。两者均能提供结合亲和力和动力学参数,但适用场景略有差异。
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文献和实验tyw5668 请问是不是免疫组化、免疫荧光、Elisa?谢谢 lianhongli 应该是酵母双杂、免疫共沉淀和共定位吧。 gingivalis 不管答案是什么,千万不要以为这就是权威。 方法是无限的。不怕做不到,就怕想不到。 summityoung 1.酵母双杂交是初筛 2.筛到得蛋白要用Co-IP、GST
最近 WB 的结果趋势不是很理想,因为给了蛋白 B 的抑制剂蛋白 B 却没有明显变化。于是大伙儿一合计,可能需要再看看蛋白质之间的相互作用,会不会是抑制剂影响了蛋白 B 和蛋白 C 之间的结合,而不是直接导致蛋白 B 的降解。 大家都知道研究蛋白质相互作用的三大经典方法是:酵母双杂交(Y2 H),免疫共沉淀(CoIP)和 GST pulldown。结合我们课题组的这个实验,因为只需看看蛋白 B 和 C 之间的结合,而且已知蛋白 B 和 C 是会结合的,所以可能用 CoIP 最简便
纯化最常用的方法之一,是亲和层析法,借助标签和配体的亲和力进行蛋白纯化。纯化的重组蛋白通常能以特异性的方式被洗脱,例如,在 Strep 标签蛋白纯化中,加入生物素(biotin)即可断开 Strep 标签与配体 Strep - Tactin 的作用,达到有效洗脱的目的。得到高纯度有活性的蛋白质应用在多种下游实验中,如研究蛋白质间相互作用等。 那么是否可以以此为基础,将标签配体亲和力加以利用,结合免疫识别特性,用温和的方法得到高纯度的目的细胞呢? 一、「画龙点睛」的表位标签—— Fab
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