大鼠性大鼠获得性肾囊肿模型

大鼠感染性损伤模型

对200g SD大鼠背部做2cm×2cm创面，深达肌层，肌层伤口厚度约0.3cm。充分止血后，在创面涂粪液约1mL （粪液的制备：大鼠新鲜粪便10g，加生理盐水5mL，充分混均匀，离心机离心，取其上清液，每天现配现用） 48h后观察创面见伤口有黄脓性分泌物，有粪臭味者为造模成功。 后续采用负压治疗时，创面用医用泡沫敷料覆盖，每天2h，-125mmHg持续负压，连续5天。（负压治疗进行5天），分析创面各时间点愈合情况。最后采用多普勒超声扫描创面，记录各创面血流量！

大鼠 SCI 模型

大鼠麻醉后，背部脱毛，于 T9-T11 胸椎区域消毒，划约 2-3cm 纵行切口，咬除椎板，暴露硬脊膜，将大鼠固定于多功能鼠固定台，应用脊髓打击器撞击骨髓（打击高度 12mm，重量 10g）大鼠出现尾部痉挛性摆动，表明造模成功。造模后，对各组大鼠进行脊髓损伤的行为学评分，利用斜板实验评测动物脊髓损伤后神经功能恢复情况，分析在脊髓损伤不同时期的变化规律。

大鼠缺血性休克模型

选取颈部正中切口,切开皮肤,钝性分离暴露气管,留单线,动脉夹夹住颈动脉一侧，须夹稳，注意保持大鼠呼吸道的顺畅，以免发生窒息。左侧颈动脉穿刺插管，监测平均动脉压；,塑料管插管,用线结扎固定气管插管，血液通过颈动脉插管放血，直至达到平均动脉血压为 35±5 mm Hg；将该压力保持 60 分钟。休克过程中上下轻微移动注射器空筒调节注射器内的血液水平来控制平均动脉血压，放血后封管，持续观察血压，你学废了嘛