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绿色荧光示踪探针 CytoTrace Ultra Green

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  • 21800
  • 2026年04月06日
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    • 英文名

      CytoTrace™ Ultra Green

    • 库存

      50

    • 供应商

      广州市左克生物科技发展有限公司

    • 规格

      1mg

    产品参数
    Ex (nm) - Em (nm) -
    分子量 822.72 溶剂 DMSO
    存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
    产品概述

    CytoTrace Ultra Green新一代荧光示踪探针,非常适合跟踪细胞的运动或位置。该染料可以很好地保留在细胞中,并且追踪活细胞数代。与在相同条件下的CMFDA相比,CytoTrace Ultra Green明显更亮,光稳定性更高并且更耐用。在组织固定后,这种染料产生的信号将非常稳定,使其成为与其他类型的分析方法(如细胞毒性等)结合用于多色应用的理想选择。 CytoTrace Ultra Green的激发光谱和发射光谱与FITC相同,并且与常见的红色荧光染料(例如Texas Red,Cy5,Cy7,iFluor 647和750,AlexaFluor®647和750)完全分离。 CytoTrace Ultra Green可轻松用于各种生物应用的活细胞跟踪,并与流式细胞仪和荧光显微镜兼容。,为您提供优质的CytoTrace Ultra Green。 

    实验方案

    实验方案

    简要概述

    1. 准备实验细胞
    2. 溶液配制
    3. 在室温或37℃下将染料与细胞一起孵育15至30分钟
    4. 去除染料中的工作溶液
    5. 使用流式细胞仪分析(Ex / Em = 490/520 nm-FITC滤波器)

     

    溶液配制

    储备溶液配制

    CytoTrace Ultra Green原液(2-10 mM)添加适量的DMSO充分混合以制成CytoTrace Ultra Green原液(2-10 mM)。注意:储备溶液应立即使用;所有剩余的溶液应等分,并在<-20 o C下冷冻。避免重复冻融循环,并避光。

     工作溶液配制

    CytoTrace Ultra Green工作溶液通过用Hanks和20 mM Hepes缓冲液(HHBS)或自备的pH=7的缓冲液稀释DMSO储备液,制备0.5至5 µM的染料工作液,并离心。注意:在某些细胞类型,可能需要较低的浓度才能染色细胞。我们建议在进行实验之前针对每种细胞类型进行测试以获得佳浓度使实验更顺利。

     

    操作步骤

    1. 用测试化合物处理细胞。

    2. 离心细胞以获得每管2-10×10 5个细胞。

    3. 将细胞重悬于500 µL CytoTrace Ultra Green工作溶液中。

    4. 在室温或37°C下,将细胞与染料溶液孵育15至30分钟,避光。

    5. 从细胞中除去染料工作溶液;可选:4%甲醛固定细胞。

    6. 用HHBS或自备的缓冲液洗涤细胞一次。

    7. 将细胞重悬于500 µL预热的HHBS或培养基中,每管可得到2-10×10 5个细胞。

    8. 使用流式细胞仪或带有FITC滤波片组的荧光显微镜检测Ex / Em = 490/520 nm处的荧光变化。

     

    图示

    产品细节图片1

    图1. Jurkat细胞中CytoTrace Ultra Green与CMFDA的荧光强度比较。在37 ℃,5%CO2培养箱中,将Jurkat细胞用CytoTrace Ultra Green和CMFDA染料分别加载30分钟。使用带有FITC通道的ACEA NovoCyte 3000流式细胞仪测量荧光强度。

     

    参考文献

    Fluorescence-Based Transport Assays Revisited in a Human Renal Proximal Tubule Cell Line
    Authors: Caetano-Pinto P, Janssen MJ, Gijzen L, Verscheijden L, Wilmer MJ, Masereeuw R.
    Journal: Mol Pharm (2016): 933

    The variable chemotherapeutic response of Malabaricone-A in leukemic and solid tumor cell lines depends on the degree of redox imbalance
    Authors: Manna A, De Sarkar S, De S, Bauri AK, Chattopadhyay S, Chatterjee M.
    Journal: Phytomedicine (2015): 713

    Cell membrane tracker based on restriction of intramolecular rotation
    Authors: Zhang C, Jin S, Yang K, Xue X, Li Z, Jiang Y, Chen WQ, Dai L, Zou G, Liang XJ.
    Journal: ACS Appl Mater Interfaces (2014): 8971

    A multiple model probability hypothesis density tracker for time-lapse cell microscopy sequences
    Authors: Rezatofighi SH, Gould S, Vo BN, Mele K, Hughes WE, Hartley R.
    Journal: Inf Process Med Imaging (2013): 110

    Evaluation of stability and sensitivity of cell fluorescent labels when used for cell migration
    Authors: Beem E, Segal MS.
    Journal: J Fluoresc (2013): 975

    TLM-Tracker: software for cell segmentation, tracking and lineage analysis in time-lapse microscopy movies
    Authors: Klein J, Leupold S, Biegler I, Biedendieck R, Munch R, Jahn D.
    Journal: Bioinformatics (2012): 2276

    Horizontal DNA transfer from donor to host cells as an alternative mechanism of epithelial chimerism after allogeneic hematopoietic cell transplantation
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    The exocytosis of fluorescent nanodiamond and its use as a long-term cell tracker
    Authors: Fang CY, Vaijayanthimala V, Cheng CA, Yeh SH, Chang CF, Li CL, Chang HC.
    Journal: Small (2011): 3363

    The interplay between Leishmania promastigotes and human Natural Killer cells in vitro leads to direct lysis of Leishmania by NK cells and modulation of NK cell activity by Leishmania promastigotes
    Authors: Lieke T, Nylen S, Eidsmo L, Schmetz C, Berg L, Akuffo H.
    Journal: Parasitology (2011): 1898

    Cell electrofusion visualized with fluorescence microscopy
    Authors: Trontelj K, Usaj M, Miklavcic D.
    Journal: J Vis Exp. (2010)

     

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