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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 供应商:
爱必信(上海)生物科技有限公司
- 规格:
500T
| 概述 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 描述 |
【检测原理】 试剂盒采用均相时间分辨荧光技术(TR-FRET),用于测定分子胶 BCL-XL DEGRADER-2 及待检测化合物介导的 VHL 复合体与 BCL-XL 相互作用。该方法是实现简单快速的检测能够介导 VHL 复合体与 BCL-XL 相互作用的小分子的高通量形式。 如所示,VHL 和 BCL-XL 之间的相互作用是通过使用Eu标记的抗Tag1抗体(TR-FRET 供体)和 Accepter 标记的抗 Tag2 抗体(TR-FRET受体)检测的。由于分子胶 BCL-XL DEGRADER-2 介导了 VHL 与 BCL-XL 的相互作用,供体抗体与受体抗体接近,供体抗体的激发会触发向受体抗体的荧光共振能量转移(FRET),使受体抗体特异性发射665nm波长的信号。该特定信号与 BCL-XL DEGRADER-2 和 VHL、BCL-XL 的相互作用的程度成正比。该均相实验操作简单,无需洗涤步骤。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 产品组成 |
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| 使用方法 |
1. 试剂准备
使用前将所有试剂室温融化(室温平衡至少30min)。384浅孔板反应体系为20uL(反应体系试剂用量如表所示),在配制之前计算实验所需体积,按需配制;以下配制仅供参考,以500次为例。
1.1 缓冲液(1x)配制 1.2mL Detection buffer (10x)中 加入10.8mL无菌水,混匀备用 1.2 Tag1-VHL protein工作液配制 取67uL Tag1-VHL protein 原液,加入 1x 缓冲液 1.9mL, 混匀备用 1.3 Tag2- BCL-XL protein工作液配制 取6.5uL Tag2- BCL-XL protein原液,加入 1x 缓冲液 2mL, 混匀备用 1.4 Anti-Tag1 Eu cryptate antibody工作液配制 取50uL Anti-Tag1 Eu cryptate antibody 原液,加入 1x 缓冲液 2.45mL, 混匀备用 1.5 Anti-Tag2 Ac antibody工作液配制 取25uL Anti-Tag2 Ac antibody 原液,加入 1x 缓冲液 2.5mL, 混匀备用 1.6 Mix-1配制 Anti-Tag1 Eu cryptate antibody和Anti-Tag2 Ac antibody分别稀释后1:1混匀备用 1.7 BCL-XL DEGRADER-2 或待检测化合物配制 按照反应体系,BCL-XL DEGRADER-2 或待检测化合物应用Detection buffer稀释至体系终浓度的10倍。例如体系终浓度为150nM, 应稀释浓度为1500nM。同时稀释相同百分含量的DMSO作为阴性对照孔,每孔用量2uL 2. 加样及对照 2.1 实验孔加样顺序:4uL Tag1-VHL protein,4uL L Tag2- BCL-XL protein,2uL BCL-XL DEGRADER-2 或待检测化合物,10uL混匀的Mix-1,依次加入384浅孔板中。 2.2 阴性对照孔(Blank): BCL-XL DEGRADER-2 或待检测化合物替换为2uL相同百分含量的DMSO溶液。 2.3 质控孔:15uL 1x 缓冲液加5uL稀释后的Anti-Tag1 Eu cryptate antibody。 3. 检测 用封板膜封住板孔,室温孵育2h。在兼容TR-FRET的酶标仪上检测(激发光为320nm,检测620nm和665nm的发射波长)。 【结果计算】
【数据示例】 以下数据不能代替实验中获得的数据,只作为示例,结果可能因TR-FRET兼容仪器而异。
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| 性能 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 储存/保存方法 |
将试剂盒保存在-80°C或以下。在适当的储存条件下,试剂保持稳定直到标签上标明的有效期。试剂一旦解冻, BCL-XL和VHL原液可以再冻融一次;标签抗体溶液可以再冻融一次。为了避免反复冻融,建议将剩余的原液分装到一次性容器中用于-80°C储存。解冻后的稀释液和检测缓冲液可储存在2-8°C。 |
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文献和实验ChIP‐chip for Genome‐Wide Analysis of Protein Binding in Mammalian Cells
., Botstein, D., Snyder. M., and Brown, P.O. 2001. Genomic binding sites of the yeast cell‐cycle transcription factors SBF and MBF. Nature 409:533‐538. Ji, X., Li, W., Song, J., Wei
., Snyder, M., and Brown, P.O. 2001. Genomic binding sites of the yeast cell‐cycle transcription factors SBF and MBF. Nature 409:533‐538. Kim, J., Bhinge, A.A., Morgan, X.C
Specificity Profiling of Protein‐Binding Domains Using One‐Bead‐One‐Compound Peptide Libraries
., and Pei, D. 2009. On‐bead screening of combinatorial libraries: Reduction of nonspecific binding by decreasing surface ligand density. J. Comb. Chem. 11:604‐611. Chen, X.W., Ren
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