TR-FRET Kinase-TK Assay Kit

TR-FRET Kinase-TK Assay Kit

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  • ¥2400 - 18000
  • Absin已认证
  • abs560013
  • 2025年07月13日
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    • 详细信息
    • 技术资料
    • 规格

      200T/500T/2000T

    规格:200T产品价格:¥2400.0
    规格:500T产品价格:¥4500.0
    规格:2000T产品价格:¥18000.0
    概述 
    描述

    TR-FRET Kinase-TK Assay Kit是一种采用均相时间分辨荧光技术(TR-FRET)测定酪氨酸激酶活性的通用方法,适用于多种酪氨酸激酶的活性检测及抑制剂筛选,该方法操作简单。
    如下图所示,检测方法包括酶促反应和检测两个步骤。在酶促反应过程中,体系成分包括激酶、生物素化底物以及ATP,加入ATP后,激酶将生物素化的TK底物磷酸化。在检测步骤中,用检测缓冲液稀释检测试剂,缓冲液中的EDTA将酶促反应终止,供体Eu标记的抗体和受体标记的链霉亲和素同时捕获被磷酸化的底物,结合在底物上的两种检测试剂产生的TR-FRET信号与底物磷酸化水平成正比,即与体系中激酶的磷酸化活性成正比。

    产品组成
    组分浓度200T500T2000T20000T
    生物素化底物1.3mM2uL5uL20uL200uL
    ATP10mM20uL50uL200uL2mL
    受体标记链霉亲和素1mg/mL5uL12.5uL50uL500uL
    Eu标记抗体70×15uL38uL150uL1.5mL
    酶促缓冲液0.5mL1.25mL5mL50mL
    检测缓冲液2mL5mL20mL200mL
    使用方法
    以384浅孔板为例
    需自备试剂:

    激酶,ddH2O,DTT, MgCl2,MnCl2

    一、试剂配制
    各种组分工作液配制后不建议保存,必须立即使用,为了避免降解,激酶工作液在实验过程中应保存在冰上。
    1、激酶缓冲液1×:用ddH2O将5× 酶促缓冲液稀释至1×,添加DTT,MgCl2,MnCl2配置成1× 激酶缓冲液。注:推荐添加浓度1mM DTT,5mM MgCl2,5mM MnCl2。具体的金属离子及浓度需要根据不同的激酶进行调整。
    2、检测缓冲液:提供1×工作液。
    3、抑制剂:用1×激酶缓冲液稀释化合物,稀释为酶促步骤(10uL)所需终浓度的2.5倍的工作溶液。
    4、激酶:用1×激酶缓冲液稀释,配置浓度为165nM的工作液(酶促步骤终浓度33nM)。
    5、生物素化底物:用1×激酶缓冲液稀释生物素化底物原液,配置酶促步骤(10uL)所需浓度浓度5倍的工作液。建议浓度1uM,配置浓度为5uM的工作液。
    6、ATP:用1×激酶缓冲液稀释ATP原液,配置酶促步骤(10uL)所需浓度浓度5倍的工作液,建议酶促步骤终浓度100uM。
    7、受体标记链霉亲和素:用1×检测缓冲液稀释受体标记链霉亲和素,建议配置浓度为稀释200倍至5ug/mL(终浓度1.25ug/mL),受体标记链霉亲和素的用量可根据实际情况进行优化。
    8、Eu标记抗体:用1×检测缓冲液按照稀释倍数稀释至1×即为工作液。

    二、操作步骤
    组分实验孔阴性对照Eu标记抗体对照缓冲液对照
    抑制剂/激酶缓冲液4uL6uL
    激酶缓冲液
    10uL
    激酶缓冲液
    10uL
    激酶缓冲液
    激酶2uL2uL----
    生物素化底物2uL------
    ATP2uL2uL----
    酶促反应(10uL):37℃孵育1h。
    生物素化底物5uL5uL----
    Eu标记抗体5uL5uL5uL--
    检测缓冲液----5uL10uL
    检测步骤:室温孵育1h后,上机。
    注:
    1、抑制剂在酶促反应步骤添加,建议将抑制剂与激酶分别添加后在37℃孵育15min,加入底物和ATP,酶促反应体系中,建议DMSO浓度不高于2%。
    2、阴性对照:非特异性信号,用于计算反应体系的特异性信号值。
    3、缓冲液对照:排除缓冲液对信号值的影响。
    4、Eu标记抗体对照:用于验证Eu标记抗体在620nM的正常信号值。


    三、检测
    在兼容的TR-FRET酶标仪上检测(激发光为320nm,检测620nm和665nm的发射波长)。

    四、结果计算
    1、计算每个孔位的受体和供体的发射信号的比值
    比值 =(Signal 665nm/Signal 620nm)*10000。
    2、计算每个孔的受体和供体发射信号的增量比
    Net signal = [Ratio(实验孔)- Ratio(阴性对照孔)]/ Ratio(阴性对照孔)*100
    3、计算变异系数CV%(复孔检测时,计算复孔之间的变异系数)
    CV% = 标准差/平均值*100%。

    五、示例数据
    以下示例仅用于参考,具体实验体系应根据具体情况进行调整优化。
    1、底物滴定
    示例的激酶是EGFR,酶促反应步骤中,EGFR终浓度100nM,生物素化底物终浓度从1uM进行三倍稀释至12.3nM,ATP终浓度100uM,孵育1h后加入检测试剂室温孵育1小时,上机读板。可以发现,TR-FRET信号值与反应体系中的底物浓度成正比。
    2、酶滴定
    此步骤确定适合的酶浓度,保持高检测信号的基础上节省酶的用量。根据底物滴定结果,选取底物终浓度为1uM,酶促反应步骤中,EGFR终浓度最高100nM,进行3倍梯度稀释, ATP终浓度100uM,孵育1h后加入检测试剂室温孵育1h,上机读板。结果表明,信号值与EGFR浓度成正比
    3、ATP滴定
    根据以上结果,酶促反应体系中EGFR终浓度为33nM,生物素化底物终浓度为1uM ,ATP终浓度最高200uM进行3倍梯度稀释至5nM。孵育1h后加入检测试剂室温孵育1h,上机读板。
    4、生物素/链霉素和素配比优化
    生物素/链霉亲和素的配比优化是提高检测信号的重要步骤,建议检测浓度配比涵盖20-1ug/mL,检测时设置每个链霉亲和素浓度对应的对照孔。
    性能 
    储存/保存方法
    -80°C保存,其中受体标记链霉亲和素、酶促缓冲液、检测缓冲液在4°C保存;有效期2年。
    温馨提示:本产品仅作科研实验使用,不支持临床等
     
    Revvity 62TK0PEC

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