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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
20
- 英文名:
X-Green II
- 保质期:
18个月
- 供应商:
上海烜雅生物科技有限公司
- 保存条件:
4℃避光保存,有效期见外包装
- 规格:
200T/2000T
| 规格: | 200T | 产品价格: | ¥566.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 2000T | 产品价格: | ¥4618.0 |
产品概述:
产品名称:X-Green II 双链DNA定量试剂盒升级版
产品规格:200T/2000T
产品应用方向:定量双链DNA、NGS建库
产品保存条件:4℃避光保存,有效期见外包装
产品运输条件:冰袋
保质期(月):18
产品介绍:
X-Green II双链DNA定量试剂盒升级版效能等同于Quant-iT™ PicoGreen™ dsDNA Assay Kits,X-Green II是荧光检测dsDNA并进行定量的一种产品,这种方法非常灵敏。常用于分子生物学技术:cDNA文库的构建、亚克隆的DNA片段纯化及应用,比如进行DNA定量、产物扩增和引物的进一步检测。常规的DNA含量的检测方法是在260 nm处测其吸光值。这种方法的主要缺点是核苷酸、单链核酸和蛋白质对信号的影响很大,并且还会受到核酸制备过程中污染物的干扰,无法区分DNA和RNA,而且这种方法不灵敏(5 μg/mL dsDNA溶液A260=0.1)。X-Green II定量方法简单、方便,成为生物制品残留DNA检测的标准。 X-Green II只有与dsDNA结合后才发出荧光,并且所发荧光强度与DNA浓度成正比X-Green II双链DNA定量试剂盒升级版可以检测出25 pg/mL-1000 ng/mL范围内的dsDNA,且线性关系较好(R2>0.99)。
使用方法:
试剂制备 X-Green II是以1 mL的浓缩液形式保存在有机溶剂中。实验时,配制2×X-Green II工作液:将组分A用1×Buffer(组分B 稀释20倍)按1:200的比例稀释。对于终体积为2 mL的检测体系,如需准备足够20个样品测定的工作液,可在 19.9 mL 1×Buffer 中加入100 μL组分A;对于终体积为200 μL的检测体系,如需准备足够20个样品测定的工作液,可在1.99 mL 1×Buffer中加入10 μL组分A。由于试剂容易吸附到玻璃表面,要在塑料容器中配制。组分A试剂见光易降解,因此要注意避光保存。溶液最好在配制好的数小时内使用,以保证最佳的实验结果。
实验方法 1. 用无菌水将组分 B 稀释成 1×Buffer。如制备 50 mL 1×Buffer,需要将 2.5 mL 组分 B 加入到 47.5 mL 无菌水中。 2. 稀释DNA标准品,制作标准曲线。用1×Buffer将组分C由100 μg/ mL稀释至2 μg/ mL。如取40 μL组分C,加入1.96 mL无菌水。对于低浓度的标准曲线,可以把2 μg/mL的DNA标准品稀释40倍,制备50 ng/mL的DNA储液,然后再进一步稀释。具体稀释方法可参照表1、表2。 3. 对于每个未知样品,将1-10 μL样品与99-90 μL的1×Buffer混匀,加入微孔板孔中检测。 4. 用1×Buffer按照1:200稀释组分A,制备2×X-Green II工作液。对于每个标准品和每个未知样品,都需要100 μL的体积。确定要测试的样品和未知样品的总数,并将该数值乘以100 μL,即为所需稀释的X-Green II试剂的总体积。X-Green II对光敏感,融化和稀释时要注意避光操作。 5. 添加100 μL稀释的X-Green II工作液到每个标准和样品孔。吹吸三次混匀。 6. 用锡箔纸覆盖微板,并在室温下孵育5 min。 7. 读取数据,取平均值生成标准曲线,并确定未知样品DNA的浓度。

注意事项:
1. 使用前请将产品瞬时离心至管底,再进行后续实验。
2. 荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。
3. X-Green II工作液最好现配现用,以保证最佳结果。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
产品名称:X-Green II 双链DNA定量试剂盒升级版
产品规格:200T/2000T
产品应用方向:定量双链DNA、NGS建库
产品保存条件:4℃避光保存,有效期见外包装
产品运输条件:冰袋
保质期(月):18
产品介绍:
X-Green II双链DNA定量试剂盒升级版效能等同于Quant-iT™ PicoGreen™ dsDNA Assay Kits,X-Green II是荧光检测dsDNA并进行定量的一种产品,这种方法非常灵敏。常用于分子生物学技术:cDNA文库的构建、亚克隆的DNA片段纯化及应用,比如进行DNA定量、产物扩增和引物的进一步检测。常规的DNA含量的检测方法是在260 nm处测其吸光值。这种方法的主要缺点是核苷酸、单链核酸和蛋白质对信号的影响很大,并且还会受到核酸制备过程中污染物的干扰,无法区分DNA和RNA,而且这种方法不灵敏(5 μg/mL dsDNA溶液A260=0.1)。X-Green II定量方法简单、方便,成为生物制品残留DNA检测的标准。 X-Green II只有与dsDNA结合后才发出荧光,并且所发荧光强度与DNA浓度成正比X-Green II双链DNA定量试剂盒升级版可以检测出25 pg/mL-1000 ng/mL范围内的dsDNA,且线性关系较好(R2>0.99)。
使用方法:
试剂制备 X-Green II是以1 mL的浓缩液形式保存在有机溶剂中。实验时,配制2×X-Green II工作液:将组分A用1×Buffer(组分B 稀释20倍)按1:200的比例稀释。对于终体积为2 mL的检测体系,如需准备足够20个样品测定的工作液,可在 19.9 mL 1×Buffer 中加入100 μL组分A;对于终体积为200 μL的检测体系,如需准备足够20个样品测定的工作液,可在1.99 mL 1×Buffer中加入10 μL组分A。由于试剂容易吸附到玻璃表面,要在塑料容器中配制。组分A试剂见光易降解,因此要注意避光保存。溶液最好在配制好的数小时内使用,以保证最佳的实验结果。
实验方法 1. 用无菌水将组分 B 稀释成 1×Buffer。如制备 50 mL 1×Buffer,需要将 2.5 mL 组分 B 加入到 47.5 mL 无菌水中。 2. 稀释DNA标准品,制作标准曲线。用1×Buffer将组分C由100 μg/ mL稀释至2 μg/ mL。如取40 μL组分C,加入1.96 mL无菌水。对于低浓度的标准曲线,可以把2 μg/mL的DNA标准品稀释40倍,制备50 ng/mL的DNA储液,然后再进一步稀释。具体稀释方法可参照表1、表2。 3. 对于每个未知样品,将1-10 μL样品与99-90 μL的1×Buffer混匀,加入微孔板孔中检测。 4. 用1×Buffer按照1:200稀释组分A,制备2×X-Green II工作液。对于每个标准品和每个未知样品,都需要100 μL的体积。确定要测试的样品和未知样品的总数,并将该数值乘以100 μL,即为所需稀释的X-Green II试剂的总体积。X-Green II对光敏感,融化和稀释时要注意避光操作。 5. 添加100 μL稀释的X-Green II工作液到每个标准和样品孔。吹吸三次混匀。 6. 用锡箔纸覆盖微板,并在室温下孵育5 min。 7. 读取数据,取平均值生成标准曲线,并确定未知样品DNA的浓度。

注意事项:
1. 使用前请将产品瞬时离心至管底,再进行后续实验。
2. 荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。
3. X-Green II工作液最好现配现用,以保证最佳结果。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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X-Green II 双链DNA定量试剂盒升级版
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