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猪细小病毒/伪狂犬野毒株/猪圆环病毒 2 型(PPV/PRV

-gE/PCV-2) 核酸检测试剂盒(三重荧光 PCR 法)
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  • ¥4800
  • 烜雅生物已认证
  • XY-PCR380C
  • 国产
  • 2026年01月17日
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    • 英文名

      Porcine Parvovirus, Pseudorabies- Virus and Porcine Circovirus type II Detection Kit

    • 保质期

      12个月

    • 供应商

      上海烜雅生物科技有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    【产品名称】
    商品名称:猪细小病毒/伪狂犬野毒株/猪圆环病毒 2 型(PPV/PRV-gE/PCV-2) 核酸检测试剂盒(三重荧光 PCR 法)
    Name : Porcine Parvovirus, Pseudorabies- Virus and Porcine Circovirus type II Detection Kit (Real-Time PCR Method)
    【包装规格】50T/盒
    【预期用途】 猪细小病毒(PPV)、猪伪狂犬野毒株(PRV-gE)和猪圆环病毒 2 型(PCV-2)是目前常见的引起猪繁殖障碍的 DNA 病毒,这 3 种病毒常呈现混合感染,临床上以受感染母猪产畸形胎、死胎、木乃伊胎及病弱仔猪为主要症状,不易区分。目前,许多猪场同时存在这 3 种病毒引起的疾病,给养猪业造成了巨大的损失。多重荧光PCR 技术给这 3 种病原的检测带来了便利。 本试剂盒用于检测淋巴结、肝脏、肾、肺、肝、脑、睾丸、胎盘和全血等样本中的猪细小病毒、伪狂犬野毒   和猪圆环病毒 2 型,适用于这 3 种病原感染的辅助诊断。
    【检验原理】 本试剂盒分别根据猪细小病毒、伪狂犬野毒和猪圆环病毒 2 型基因保守区设计特异性引物和探针,用荧光 PCR 技术对 PPV、PRV-gE 和 PCV-2 核酸进行体外扩增检测,用于对可疑感染病料的病原学诊断。
    产品细节图片1
    【试剂组成】
    包装规格50T/盒
    PPV/PRV-gE/PCV-2 反应液500μL×2 管
    酶液50μL×1 管
    PPV/PRV-gE/PCV-2 阳性质控品50μL ×1 管
    阴性质控品250μL ×1 管
    说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
    【储存条件及有效期】 -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
    【适用仪器】 ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
    【标本采集】 疑似感染仔猪取肠系膜淋巴结或肝脏;流产或死胎的肾、肺、肝、脑、睾丸和胎盘肺、淋巴结等组织;待检   活猪,用注射器取血 5mL。
    【保存和运输】 采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不超过 3 次。
    产品细节图片2
    【使用方法】
    1.    样品处理(样本处理区)
    1.1    样本前处理 组织样品:称取样品约 1g,剪碎后于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;全血样本:待血凝固后,取血清100μL 于灭菌离心管中。
    1.2    核酸提取 推荐采用上海烜雅生物科技有限公司生产的核酸提取试剂(离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂说明书进    行操作。
    2.    试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
    试剂PPV/PRV-gE/PCV-2 反应液酶液
    用量(样本数为 N)19μL1μL
    将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。
    3.    加样(样本处理区)   将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
    4.    PCR 扩增(核酸扩增区)
    4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
    4.2    设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM、TEXAS RED、CY5, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
    4.3    推荐循环参数设置:
    步骤循环数温度时间收集荧光信号
    11 cycle95℃2min
    245 cycle95℃15sec
    60℃30sec
    5.    结果分析判定
    5.1    结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例) 反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。
    5.2    结果判断 FAM 通道为猪细小病毒检测结果,TXR 通道为伪狂犬野毒株检测结果,CY5 通道为猪圆环病毒 2 型检测结 果 阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。
    5.3    质控标准 阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
    6.    检测方法的局限性
    1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
    2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
    3.    阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
    4.    病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
    5.    不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
    6.    试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
    7.    本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
    【注意事项】
    1.    所有操作严格按照说明书进行;
    2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
    3.    反应液应避光保存;
    4.    反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
    产品细节图片3
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