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传染性造血器官坏死病毒(IHNV)核酸检测试剂盒(探针法荧光

PCR)
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  • ¥2380
  • 烜雅生物已认证
  • XY-PCR254C
  • 国产
  • 2026年01月09日
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      222

    • 英文名

      Infectious Hematopoietic Necrosis Virus Detection Kit

    • 保质期

      12个月

    • 供应商

      上海烜雅生物科技有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    【产品名称】      
    商品名称:传染性造血器官坏死病毒(IHNV)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
    Name :Infectious Hematopoietic Necrosis Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
    【包装规格】25T/盒、50T/盒
    【预期用途】 传染性造血器官坏死病是一种由传染性造血器官坏死病毒(Infectious Hematopoietic Necrosis Virus, IHNV) 引起鲑、鳟鱼类发病的一种病毒性传染病。该病常导致淡水渔场中虹鳟鱼苗、鲑科鱼苗或者幼鱼出现严重的临床症状,常以暴行流行的形式出现,并且感染后死亡率较高,通常达 90~95%。该病临床症状为:病鱼初期表现为游动迟缓、昏睡,有时表现为狂游、转圈游动等神经症状。病鱼体色发黑,鳃丝苍白、眼球突出、腹部膨胀,鳍基充血,不透明的黏液状管型粪便悬挂于肛门。剖解可见病鱼肝脏、脾脏和肾脏等器官苍白贫血,胃内空虚,肠道等器官有出血点,存活下来的鱼常出现脊柱畸形。该病被列入 OIE 水生动物疫病名录,我国农业部也将之列为二类动物疫病。 本试剂盒适用于检测的鱼的脑、肝、肾、脾、腮等组织、雌鱼的卵巢液等标本中传染性造血器官坏死病毒 RNA,适用于传染性造血器官坏死病毒感染的辅助诊断。
    【检验原理】 本试剂盒对传染性造血器官坏死病毒基因设计特异性的引物和探针,用一步法荧光 RT-PCR 技术对传染性造血器官坏死病毒 RNA 进行体外扩增检测,用于科研实验中对可疑感染者的病原学检测。
    产品细节图片1
    【试剂组成】
    包装规格50T/盒
    IHNV 反应液500μL×2 管
    酶液50μL×1 管
    IHNV 阳性质控品50μL ×1 管
    阴性质控品250μL ×1 管
    注:1)不同批号试剂不能混用。2)试剂盒内各试剂组份足够包装规格所标示的检测次数。
    【储存条件及有效期】 -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
    【适用仪器】 ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
    【标本采集】 对于有临床症状的鱼,如体长不大于 4cm,取整条鱼,体长 4~6cm 的鱼,取内脏(包括肾);体长大于 6cm 的鱼则取脑、肝、肾、脾;对于无症状的鱼,取肾、脾、腮和脑组织,成熟雌鱼还需取卵巢液。
    【保存和运输】 上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。
    产品细节图片2
    【使用方法】
    1.    样品处理(样本处理区)
    1.1    样本前处理 称取组织样品约 1g,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;卵巢液直接取 100μL。
    1.2    核酸提取 推荐采用上海烜雅生物科技有限公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提   取,请按照试剂说明书进行操作。
    2.    试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
    试剂IHNV 反应液酶液
    用量(样本数为 N)20μL1μL
    将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。
    3.    加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。  
    4.    PCR 扩增(核酸扩增区)
    4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
    4.2    设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
    4.3    推荐循环参数设置:
    步骤循环数温度时间收集荧光信号
    11 cycle42℃20min
    21 cycle95℃10min
    340 cycle94℃15sec
    55℃30sec
    5.    结果分析判定
    5.1    结果分析条件设定 设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
    5.2    结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线; 可疑:检测通道 3538 或无 Ct 值。
    6.    质控标准 阴性质控品:Ct 值>38 或无 Ct 值;阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
    7.    检测方法的局限性
    1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
    2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
    3.    阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
    4.    病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
    5.    不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
    6.    试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
    7.    本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
    【注意事项】
    1.    所有操作严格按照说明书进行;
    2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
    3.    反应液应避光保存;
    4.    反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
    产品细节图片3
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    该产品被引用文献
    [1]    国家质量监督检验检疫总局. SN/T 1474-2014 传染性造血器官坏死病检疫技术规范[S]. 北京:科学出版社, 2014. [2]    徐立蒲, 王小亮, 杨丽文, 等. 传染性造血器官坏死病诊断及防控的研究进展[J]. 中国畜牧兽医, 2013, 40(3): 209-215. [3]    徐黎明, 刘红柏, 徐进, 等. 传染性造血器官坏死病病毒高效 RT-PCR 检测方法的建立[J]. 水生生物学报, 2013, 37(6): 1164-1168.
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