- ￥16000
- 赛昂斯
- SA706
- 江苏南京
- 2026年01月09日
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赛昂斯生物
光照甩尾法也叫光热甩尾法或辐射热甩尾法，其基本原理就是将一束光照射到鼠尾上产生集热效应，使鼠尾的局部升温产生疼痛，当超过动物忍耐的痛阈时动物就产生有效的甩尾逃避，以此方法来判断动物痛阈的高低和变化的方法就叫光照甩尾法。
1.电容式触摸屏技术：99%的触控精度，小于3ms的响应速度，流畅的触控体验；
2.光照强度调节范围：20-100W，步进0.5W；
3.用户可根据实验需求设置保护时间，有效保证验动物的安全，范围：5-50s，步进1s；
4.计时精确度高达0.01s；
5.双模式切换：手动计时或自动光电计时可选；
6.最多存储200组数据，CSV格式，可通过U盘导出；
7.数据指标：动物信息、持续时间、光照强度、最大值、最小值、平均值、开始时间、结束时间。
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文献和实验领取SD雄性大鼠，体重200-220g为宜试验前测试痛阈（我们用的是意大利Ugobasile的heat-flux meter测痛仪， 国 产的功能也不差），痛阈极端大/小的最好挑除不用试验前至少3天每日早晨9点－9点半，将大鼠放入观察笼中适应环境试验时用微量注射器抽取100-200ul甲醛（浓度自己定）于大鼠下肢脚掌皮内注射，注射后留置针头约30－60sec,放大鼠入笼，摄像，人员全部离开（非常重要！）以其抬足和舔舐足掌为指标记录相关数据大鼠的饲养时要勤换垫料（最好每天换），有鼠便溏稀时要及时
大鼠痛觉模型的建立分为下面几个步骤： 1、领取SD雄性大鼠，体重200-220g为宜。 2、试验前测试痛阈（作者采用仪器为意大利Ugobasile的heat-flux meter测痛仪），痛阈极端大/小的挑除不用。 3、试验前至少3天每日上午9点－9点半将大鼠放入观察笼中适应环境。 4、试验时用微量注射器抽取100-200ul甲醛（浓度可自己定）于大鼠下肢脚掌皮内注射，注射后留置针头约30－60秒。 5、试验时，将大鼠放入观察笼，摄像，人员必须全部离开。 6、以大鼠抬足和舔舐足掌
流程。 AAV9-Pcsk9D377Y注射诱导动脉模型的详细流程： 01 小鼠饲养 小鼠的饲养应在SPF的级别或其他学术界公认的条件下饲养，必须经由有关专业培训的饲养员管理。 整个实验流程小鼠应处在稳定受控的培养条件，包括21°±2°C, 50%±10%相对湿度，12小时光照和12小时黑暗循环饲养。 小鼠在手术前一周能随意获取,并有充足的标准的饲料； 02 AAV注射 每只小鼠尾静脉注射1X1011v.g.以上总量的PCSK9 D377Y过表达
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