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- 技术资料
- 供应商:
兰博利德(LABLEAD)
- 规格:
125次(1.25 ml)/500次(4*1.25 ml)/1000次(8*1.25ml)/2500次(20*1.25ml)
| 规格: | 125次(1.25 ml) | 产品价格: | ¥200.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 500次(4*1.25 ml) | 产品价格: | ¥750.0 |
| 规格: | 1000次(8*1.25ml) | 产品价格: | ¥1350.0 |
| 规格: | 2500次(20*1.25ml) | 产品价格: | ¥2800.0 |
货号:R0212
储存条件:长期保存请于 -20℃避光保存,解冻后可在 4℃避光条件下稳定存放一个月,尽量避免反复冻融。
产品组分:
|
组分 |
货号 |
500T |
1000T |
2500T |
|
2x Visual SYBR qPCR mixture Universal |
R0212-A |
4*1.25ml |
8*1.25ml |
20*1.25ml |
|
10× Dilution Buffer |
R0212-B |
1ml |
2*1ml |
5*1ml |
产品描述
2x Visual Realab Green PCR Fast mixture通用型(示踪型定量试剂盒)是SYBR Green l嵌合染料法专用 qPCR 试剂,为2x预混液,包含除引物和 DNA 样品以外的所有 qPCR 组分,可减少操作步骤,缩短加样时间,降低污染几率。其核心组分是经抗体修饰的热启动 Tag DNA 聚合酶,配合精心优化的 Buffer 体系以及 PCR 反应促进因子,特异性强、扩增效率高,可有效抑制非特异性扩增,对宽广浓度范围的模板进行准确定量,获得稳定可靠的 qPCR结果。本品已含有通用校正染料,与绝大多数 qPCR 设备兼容,不需要额外添加染料来校正仪器。
本品可利用不同染料混合后产生的变色效应,追踪移液过程,从而显著减少移液错误。2x Visual Realab Green PCR Fast mixture通用型中包含蓝色染料,10x Dilution Buffer 中包含黄色染料。当 2x Visual Realab Green PCR Fast mixture通用型(蓝色)中加入了用 Dilution Buffer稀释的模板(黄色)后会产生蓝色→绿色的变色效应,从而可以根据液体颜色准确判断是否已加入模板。
使用方法:
1. 模板稀释
使用过程中,如需要进行移液追踪,则根据下表选择合适的方式提前添加 Dilution Buffer 至模板中,然后进行 qPCR 检测;如不需要进行移液追踪,则不使用 Dilution Buffer 即可。
|
DNA 模板状态 |
10× Dilution Buffer 使用方式 |
模版中Dilution Buffer 浓度 |
|
固体 |
使用 ddH,0 将 10x Dilution Buffer 稀释至 1x,使用 1xDilution Buffer溶解 DNA |
1x |
|
液体 |
如有必要,先使用 ddH20 将模板稀释至目标浓度,然后在每 9μl模板中加入 1ul 10x Dilution Buffer |
1x |
2. 建议的 qPCR 反应体系
|
试剂 |
使用量 |
终浓度 |
|
2x Visual SYBR qPCR mixture Universal |
10ul |
1 x |
|
正向引物(10uM)a |
0.4ul | |
|
反向引物(10uM)a |
0.4ul | |
|
DNA模版b |
X ul | |
|
Nuclease-Free Water |
To 20ul |
a. 通常推荐的引物终浓度为 0.2 μM,可在 0.1~1 μM 范围内调整;
b. 如使用 Dilution Buffer 进行加样追踪,模板体积请勿超出2~5μl/20 μl reaction。
如果模板用量低于 2 μl/20 μl reaction,会造成显色偏淡,影响追踪效果;如果模板用量高于 5 μl/20 μl reaction,Dilution Buffer 中的成分可能会干扰 qPCR 反应。不同种类 DNA 模板中含有的靶基因拷贝数目不同,必要时可进行梯度稀释,以确定最佳的 DNA 模板添加量。
注:当模板类型为未稀释 cDNA 原液时,不论其是否包含 1× Dilution Buffer,使用体积均不应超过 qPCR 反应总体积的 1/10,即 2 μl/20 μl reaction。
3. qPCR 反应程序(可根据机型适当调整)
两步法
|
步骤 |
温度 |
时间 |
循环 |
|
预变性 |
95℃ |
30s | |
|
变性 |
95℃ |
10s |
40cycles |
|
退火 & 延伸a |
60℃ |
30s | |
|
溶解曲线 |
使用仪器默认采集程序 | ||
三步法
|
步骤 |
温度 |
时间 |
循环 |
|
预变性 |
95℃ |
30s | |
|
变性 |
95℃ |
10s |
40 cycles |
|
退火a |
55~65℃ |
10s | |
|
延伸a |
72℃ |
30s | |
|
溶解曲线 |
使用仪器默认采集程序 | ||
a.根据引物的 Tm 值进行退火&延伸(退火)温度的设定;若扩增片段在 200bp 以内,退火 &延伸(延伸)时间可以设置为 15 s;此外,退火&延伸(延伸)时间的设置还需根据您使用的 qPCR 仪所需要的最短数据采集时间自行调整。
4.实验优化
① 引物浓度调整
当引物终浓度在 0.1~1.0 μM 范围之间变化时,引物浓度越低,扩增特异性越高,但扩增效率会有所下降。
② 扩增程序优化
需提高扩增特异性,可使用两步法程序或提高退火温度;需提高扩增效率,可使用三步法程序或延长延伸时间。
5.引物设计原则
① 扩增产物长度建议控制在 80~200 bp;
② 引物长度为 18~25 bp;
③ 两条 Tm 值相差不超过 1℃,Tm 值控制在 58~62℃;
④ 引物的 GC 含量控制在 40%~60%;
⑤ 引物 A、G、C、T 整体分布尽量要均匀,避开 T/C 或者 A/G 的连续结构(特别是 3' 端),3' 端最后一个碱基最好为 G 或者 C;
⑥ 避开引物内部或者两条引物之间的互补序列;
⑦ 使用 NCBI BLAST功能检索确认引物的特异性。
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