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北京永欣康泰科技发展有限公司
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皮肤瘢痕模型
一、兔耳瘢痕动物模型构建
实验动物:新西兰大白兔,4月龄,雄性,体重(2.5±0.2)kg。
分组:大白兔随机分为4组,每组6只。共24只。
(1) 负载曲安奈德的丝素蛋白组
(2) 曲安奈德组
(3) 空白载体组
(4) Pbs对照组
药物配制:(待更新)
兔耳瘢痕模型:称重(需记录)、麻醉、脱毛。在无菌条件下在每只兔耳腹侧表面深达软骨膜处制作4个直径约10 mm的全层圆形创面,去除皮肤,完整去除软骨膜,保证软骨无穿透性损伤,每个兔耳制作4个创面,每只兔子8个创面。
药物注射:分别在术后3、4、5、6周分别在瘢痕的边缘四个点及中心点(共5个注射点)皮下注射,每个点注射40ul,每个创面注射200ul。
二、 观察指标:
(1)大体观察:分别在术后3、4、5、6、7周进行以下评估:
a. 每个创面拍照,记录清楚组别和创面位置
b. 超声多普勒评价瘢痕厚度和瘢痕内血流(两项指标分别记录)
c. 色差仪记录瘢痕颜色情况
d. 温哥华瘢痕量表(VSS)分值:实验者对每一个手术创面进行评分。分值越大,表明瘢痕增生越明显。
e. 瘢痕增生指数(SEI):用测微尺测量兔耳瘢痕最高点至耳软骨表面的垂直厚度(a)、瘢痕周边正常皮肤至耳软骨表面的垂直厚度(b),计算得出瘢痕增生指数(SEI=a/b)。数值越大,表明瘢痕越厚。
切片染色和QPCR:分别在术后3、4、5、6、7周取材,共5个时间点,每个时间点每个组取材一只兔子,每只兔子取材8个瘢痕组织(其中3个瘢痕组织用于石蜡包埋,5个标本液氮保存)。
(2)切片染色包括:
a. 成纤维细胞数量:HE染色制成瘢痕组织切片,按Weidner计数方法在400倍视野光镜下随机计数3个视野的成纤维细胞数量,求其平均值。
b. Ⅰ、Ⅲ型胶原面密度:天狼星红染色切片,在100倍偏振光显微镜下每张切片随机计数3个视野,采用Image Pro Plus 6.0图像分析系统分别进行检测。I型胶原面密度(%)=(红色区域面积+黄色区域面积)/总面积×100%;Ⅲ型胶原面密度(%)=绿色区域面积/总面积×100%。
c. CD31免疫组化,计算血管密度。
d. a-SMA免疫组化,检测计算阳性率
e. TNF-a免疫荧光,计算荧光强度
(3)QPCR:
CD31、TNF-a、TGF-b、a-SMA、bFGF、I型胶原蛋白(CO I)、llI型胶原蛋白(CO 111)、MMP-1
WB(尝试):MMP-1、TGF-b

检测平台
| 服务项目 | 服务承诺 | 服务周期 | 样本种类 |
| 病理切片、免疫组化 | 染色结果照片 | 2-3周 | 组织 |
| Western blotting | 胶片 | 1-2周 | 蛋白样本或组织 |
| 流式细胞服务 | 散点图、分析数据、设备信息等 | 1-2周 | 血样、骨髓等 |
| 细胞凋亡检测 | 凋亡图、数据分析 | 细胞 | |
| RT-PCR | 扩增图 | 1-2周 | RNA或组织 |
| 血压监测(无创式) | 实时血压数据 | 大、小鼠 |


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文献和实验[1]冯登超,杨喜明,薛宏斌,等.建立更加稳定和有效的兔耳瘢痕模型[J].中国美容医学, 2009, 18(2):4.DOI:10.3969/j.issn.1008-6455.2009.02.021.










