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北京永欣康泰科技发展有限公司
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肝癌动物模型
一、造模方法
(一)异位模型制作
将冻存的肝癌H22细胞株复苏,体外培养至对数期后,以生理盐水调整细胞浓度至1x107 个/mL,每只小鼠腹腔内注射0.5mL,共4只。注射7d后在无菌条件下抽出腹水,离心,去除杂质细胞,调整癌细胞浓度至1x107 个/mL备用,进行原位移植。
(一)原位模型制作
采取开腹手术直接注入肝脏法。昆明小鼠共36 只。取 5周龄小鼠,抓取固定,腹部剃毛,75%医用酒精消毒,麻醉,麻醉起效后,将小鼠四肢固定小手术台上,腹部再次消毒,取剑突下上腹部正中切口,长约1.2cm,剪开皮肤、腹白线及腹膜,压迫止血,轻轻挤压小鼠双侧腹壁,将小鼠肝左叶挤压出腹腔。(2)取无菌注射器将0.1mLH22肿瘤细胞注入左肝实质内,退出针头,轻压针眼,取烧红的铁丝轻灼针眼,防止肿瘤细胞逃逸,发生腹腔种植,将肝左叶轻轻送回腹腔。查无活动性出血,取1号丝线缝合腹壁各层,消毒,小创口贴切口黏贴,结束造模。
二、模型检测
1.模型观察:
2.定期观察荷瘤小鼠生存、活动状况及腹部体征。扪查腹部了解移植瘤形成时间、质地及大小,以小鼠腹部可触及实体性包块为成瘤标志。留取 10 只荷瘤小鼠观察其带瘤的自然生存期。
2.解剖学及病理学观察:
当小鼠出现消瘦、精神萎靡等体征时处死小鼠。开腹肉眼观察肿瘤生长部位、质地、活动度、浸润、腹水及腹腔转移情况。游标卡尺测量瘤体的长(l)、宽(w)、高(h)。固定瘤体,石蜡包埋,切片,经HE染色作常规病理检查。
3.血清学检测:
小鼠处死前,采用眼球摘除法取血,及时分离血清。ELISA法检测 AFP[5]、DCP[6],y-GTⅡ检测用凝胶梯度电泳法分离,凡出现I、I、Ⅲ带任一条即可判定结果阳性。

检测平台
| 服务项目 | 服务承诺 | 服务周期 | 样本种类 |
| 病理切片、免疫组化 | 染色结果照片 | 2-3周 | 组织 |
| Western blotting | 胶片 | 1-2周 | 蛋白样本或组织 |
| 流式细胞服务 | 散点图、分析数据、设备信息等 | 1-2周 | 血样、骨髓等 |
| 细胞凋亡检测 | 凋亡图、数据分析 | 细胞 | |
| RT-PCR | 扩增图 | 1-2周 | RNA或组织 |
| 血压监测(无创式) | 实时血压数据 | 大、小鼠 |

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文献和实验黄佳飞, 周洪渊, 张倜. 肝癌动物模型研究进展[J]. 国际肿瘤学杂志, 2014, 41(7): 523-525.
二乙基亚硝胺(DEN)诱发大白鼠肝癌:取体重250g左右的封闭群大白鼠,雌雄不拘。 按性别分笼饲养。除给普通食物外,饲以致癌物,即用0.25%DEN水溶液灌胃,剂量为10mg/kg,每周一次。其余5天用0.025%DEN水溶液放入水瓶中,任其自由饮用。共约4个月可诱发成肝癌。或单用0.005%掺入饮水中口吸服8个月诱发肝癌。 1. 4-2甲基氨基氮苯(DBA)诱发大鼠肝癌:用含0.06%DBA的饲料喂养大鼠,饲料中维生素B2不应超过1.5~2mg/kg,4~6月就有大量的肝癌诱发
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采用Arraystar lncRNA芯片发现病毒型肝癌的新靶点 【字体:大 中 小】 www.ebiotrade.com 时间:2011年8月4日 来源:康成生物 ------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------ 摘要: 第二军医大学孙树汉教授











