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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 供应商:
上海聚顶生物科技有限公司
- 库存:
10000
- 规格:
1ml
Anti-GFP Nanobody Agarose Beads 是一种绿色荧光蛋白结合蛋白偶联的琼脂糖,能够高效特异地结合绿色荧光蛋白 GFP,其结合效率可高达4ug/10ul,相比于直接运用GFP抗体和proteinA/G偶联的Beads,其效率要高很多。
该Beads可运用于两个蛋白或者多个蛋白的互作分析(Co-IP),蛋白和DNA互作(DNA pull down 或者 CHIP),蛋白和 RNA 互作(RIP)还可以用作质谱分析以及酶活分析。
Anti-GFP Nanobody Agarose Beads产品不仅能够高效识别结合各种 GFP,比如Egfp、ACGFP,wtGFP, GFP S65T,TagGFP 等,还能识别 CFP、YFP、BFP 等荧光蛋白。产品结合效率非常高,比常规结合方式——抗体+beads 的方式高出很多(如图一)。
【GFP Beads 适应样品范围广】
适用于组织,器官,细胞,植物材料,细菌,酵母,总之,有 GFP 蛋白的样品该 beads 都能够直接识别结合。
【应用】
IP、 CoIP、ChIP、RIP
【注意事项】
1. 因纯beads不好分装,有分装需求的客户,需要和溶液1比1混匀了后分装。
2.如管壁有粘连的beads,可将管子稍静止后吸上层缓冲液冲洗至离心管底部,切勿高速离心。
【使用该产品做 Co-IP方法】
1. 轻轻上下颠倒 GFP-Beads,使得beads充分混匀,取200ul枪头将前端剪掉1-2mm使枪头口径稍大,用剪过的枪头吸出所需体积量的beads至1.5ml的离心管中,一个样品大约30ul beads。
2. 加入 1ml washing buffer,轻轻上下颠倒清洗 beads,然后 800g,4℃离心 5min,吸掉上 清液。如此重复三遍。
3. 将转染后的细胞弃掉上清,用 PBS 清洗一遍,然后胰酶重悬(为重悬充分,加入胰酶后 37℃ 孵育 5min)。枪头轻轻重悬细胞转移至 1.5ml 离心管,800g 离心 5min,弃上清。
4. 利用以下 lysis buffer 裂解(10 mM Tris/Cl pH 7.5; 150 mM NaCl; 0.5 mM EDTA; 0.5% NP-40;1xcocktail)。枪头充分吹吸至细胞完全裂解,冰浴 10min。
5. 高速离心后,将上清液吸出,加入30微升 GFP-BEADS 孵育,4℃垂直混匀 2-3h(也可 4℃ 过夜)。推荐30ul beads 结合至少两个6cm皿细胞表达量的蛋白,在蛋白表达量低的情况 下可多收集样本量保证样品饱和 beads。
6. 800g,4℃离心5min,吸掉上清液,(可取一定量上清液作为对照),加入1ml预冷的washing buffer,上下颠倒清洗 beads,然后 800g,4℃离心5min。重复3-5遍。
7. 充分除去上清,加入30-50微升 4x sample buffer,混匀后100℃煮10min。如需蛋白不变性或非变性则需50-100微升200毫摩尔PH2.5 的甘氨酸溶液洗脱目的蛋白,可在 4℃条件下垂直混匀 10min,800g 离心,将上清转移至新离心管,加入5-10微升中和buffer 1 M Tris pH 10.4 (四度下的 PH)。 Western 或者 IP MS 的样品属于变性蛋白,不需按此处理,煮样后进行下一步操作。)
8. 13000rpm离心10min,上清液可用western blot鉴定。如果是质谱检测,wb后切胶酶解,纯化后上机检测。
【推荐 washing buffer】
10 mM Tris/Cl pH 7.5; 150 mM NaCl; 0.5 mM EDTA。
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【质量保证】
Anti-GFP Nanobody Agarose Beads 的每批产品实行严格质量检验,并进行多次反复实验验证,以确保产品质量。请用户使用前务必认真阅读本手册。
【使用限制】
本产品仅供科研使用。在确认产品质量出现问题时,本公司承诺为客户免费更换等量的质量合 格产品。
在所有情况下,本公司对此产品所承担的责任,仅限于此产品的价值本身。
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文献和实验Two-hybrid analysis of genetic regulatory networks
with antibodies to its epitope tag, is expressed at the same level in each diploid, and that the baits, which can be detected with anti-LexA antibody and whose DNA binding can be quantitated by a repression assay (Brent and Ptashne, 1984), occupy the operators











