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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
45
- 英文名:
CDO, CDO 1, CDO I, CDO-I, Cdo1, CDO1_HUMAN, CDOI, Cysteine dioxygenase type 1, Cysteine dioxygenase type I, Cytosolic cysteine dioxygenase
- 供应商:
上海西格
- 保存条件:
-20°C for up to 1 year
- 规格:
50μg/200ug/1mg
| 规格: | 50μg | 产品价格: | ¥3870.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 200ug | 产品价格: | ¥7200.0 |
| 规格: | 1mg | 产品价格: | ¥22680.0 |
| 货号 | XG-DB1717 | 种属 | Human |
| 宿主 | E.Coli | 表达区间 | 1-200 |
| 分子量 | 21.9 kDa | 标签 | N-terminal His Tag |
| 规格 | 50μg、200ug、1mg | 用途 | 仅供科研实验 |
| 别称:CDO, CDO 1, CDO I, CDO-I, Cdo1, CDO1_HUMAN, CDOI, Cysteine dioxygenase type 1, Cysteine dioxygenase type I, Cytosolic cysteine dioxygenase 纯度 Greater than 95% by SDS-PAGE gel analyses 应用 Western Blot, ELISA 性状 Lyophilized from a 0.2 μm filtered solution in 10 mM Hepes, 500 mM NaCl with 5% trehalose, pH7.4 溶解方法Centrifuge the vial at 10,000 rpm for 1 minute, reconstitute at 200 μg/ml in sterile distilled water by gentle pipetting 2-3 times, don’t vortex 存储 -20°C for 12 months as lyophilized; 2-8°C for 1 month under sterile conditions after reconstitution |
重组蛋白的制备涉及多个步骤,包括基因克隆、表达系统选择和蛋白纯化:
● 基因克隆:基因克隆是将目标基因导入表达载体中的过程。研究人员可以选择不同的克隆方法,如限制性酶切克隆、PCR扩增克隆等,根据需要构建目标基因的DNA序列。
● 表达系统选择:选择适合的表达系统是重组蛋白制备的关键一步。常用的表达系统包括大肠杆菌、酵母、昆虫细胞和哺乳动物细胞。每种表达系统都具有不同的优缺点,适用于不同类型的蛋白质表达。
5大蛋白表达系统:
表达、纯化、复性和定量,具体步骤如下:
一、重组蛋白质的诱导表达
1. 挑取转化有质粒的单菌落, 接种于 3ml 选择性 LB 液体培养基中, 37 oC,250 rpm/min 振摇培养过夜。
2. 次日将培养过夜的菌液 500 μl 再接种于 10ml(1:20)选择性 LB 液体培养基 中, 37 oC,250 rpm/min 振摇培养至光密度(OD600=0.6)时,取 1 ml 样本作 为诱导前标本, 10000g 离心 1min 收集菌体沉淀,-20 oC 冻存备用。
3. 加入 1 mol/L IPTG 于菌液中,使 IPTG 终浓度为 1 mM ,37 oC ,250 rpm/min 振摇培养 4 ~ 5 小时。取 1 ml 样本作为诱导后标本,同上法收集菌体沉淀, -20 oC 冻存备用。
4. 将诱导前后菌体沉淀用 20 ~ 40 μl PBS(pH= 8.0)重悬, 加入等体积的 2×SDS 上样缓冲液, 煮沸加热 5min,SDS 凝胶(SDS-PAGE)电泳分离 , 考马斯亮蓝染色 3 小时后,脱色观察结果。
5. 选取诱导成功的细菌克隆,扩大诱导规模,收集菌体沉淀,于- 20 oC 保存,准备做下一步分析及纯化。
二、重组蛋白质的分离纯化
重组蛋白质的可溶性鉴定
1. 将按上法诱导培养后收集的菌体重悬于裂解液 1 (Lysis buffer under native conditions )中,然后在-80 oC 低温冰箱中放置 10 min。
2. 冰中解冻。
3. 在冰浴上用超声破碎仪破菌 6 次, 每次 10 sec,间歇 10 sec,电压 200-300 V。
4. 10000g,4oC,离心 20min,取上清(为溶液 A), - 20 oC 保存; 另将沉淀用 同样裂解液 1 溶解(为溶液 B),同样 -20 oC 保存,供后继分析使用。
5. 将上述 A、B 溶液和诱导前后的细菌进行 SDS-PAGE 电泳, 考马斯亮蓝染色, 比较分析重组蛋白质的溶解性。如果诱导表达的蛋白质位于 A 溶液中, 则为
可溶性蛋白;如果是在 B 溶液中,则为非可溶蛋白。
重组蛋白质为非可溶性蛋白( 变性条件下)的分离纯化
1. 将菌体沉淀溶于适量裂解液 2(Lysis buffer under denaturing conditions )中,室温下搅拌和吹打沉淀,避免泡沫生成。
2. 10000g ,4 oC,离心 30 min,收集上清液。
3. 将 Ni-NTAAgarose 充填柱子,并连接于 Pharmarcia 低压液相层析系统,用 5 倍柱体积的裂解液 2 平衡 Ni-NTAAgarose,调节 A280 值至零线。
4. 将适量上清液上样到 Ni-NTAAgarose 柱子中, 并用 lysis buffer 冲洗至 A280 值低于 0.01。
5. 分别用 5 ~ 10 倍柱体积的清洗液 1 和清洗液 2(Washbuffer 1 and 2)清洗柱 子,直至 A280 值低于 0.01。
6. 用洗脱液(Elution buffer)洗脱重组蛋白质, 在 A280 值监测下,收集出现峰 线后含有重组蛋白的所有洗脱液。
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