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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
大量
- 保质期:
一年
- 供应商:
贝博
- 保存条件:
2-8℃
- 规格:
50T
贝博® BBproExtra® 总蛋白提取试剂盒提供全套试剂,适用于从各种原代或传代培养动物细胞和各种动物实体组织,如脑、脊髓、神经结或纤维、脂肪、肝脏、消化道、肾脏、心脏、肌肉、血管、结缔组织等动物组织样品中提取总蛋白。配合其他试剂时,也可以用于植物、细菌、真菌、酵母等样品的总蛋白提取。 本试剂盒含有的独特配方能够有效溶解细胞膜组份,包括细胞质膜、核膜和各种细胞器膜。本试剂盒含有的蛋白酶抑制剂混合物,阻止了蛋白酶对蛋白的降解,为提取高纯度的蛋白提供了保证。 本试剂盒提取的蛋白可用于Western Blotting、蛋白质电泳等下游应用。不可以用于免疫沉淀、ELISA、转录活性分析、Gel shift凝胶阻滞实验、酶活性测定等下游蛋白研究实验。需要IP、酶活分析等应用请使用贝博其他货号的试剂盒(相关产品BB-3101)。 本试剂盒提取的蛋白样本含有高浓度的盐成分,不可直接用于2D电泳,如下游实验需要直接用于等电聚焦、双向电泳,请使用贝博其他货号的试剂盒(相关产品BB-3181)。也可以将最后样品除盐后再用于2D电泳,用脱盐柱脱盐处理(相关产品BB-38113)
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文献和实验悬浮细胞蛋白提取:
1. 提取液准备:
每500 μl冷的总蛋白提取液中加入2 μl蛋白酶抑制剂混合物和2 μl磷酸酶抑制剂混合物,混匀后置冰上备用。
2. 取5×106个细胞,在4℃,2500×g条件下离心5分钟,小心吸取培养基,尽可能吸干,收集细胞。
3. 用冷PBS洗涤细胞两次,每次洗涤后尽可能吸干上清。
4. 每5×106 -1×107个细胞(大约50 mg细胞/50 μl细胞沉淀体积)中加入500 μl冷的总蛋白提取液,吹打混匀后,在4℃条件下振荡20-30分钟,至细胞充分裂解,无明显细胞沉淀。
5. 在4℃,12000×g条件下离心15分钟。
6. 将上清吸入另一预冷的干净离心管,即可得到总蛋白。
7. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
贴壁细胞蛋白提取:
1. 提取液准备:
每500 μl冷的总蛋白提取液中加入2 μl蛋白酶抑制剂混合物和2 μl磷酸酶抑制剂混合物,混匀后置冰上备用。
2. 小心吸取贴壁细胞的培养液。
3. 用冷PBS洗涤细胞两次,每次洗涤后尽可能吸干PBS。
4. 加入适量冷的总蛋白提取液,振荡15-30分钟,至细胞充分裂解,用细胞刮刀刮一遍,将裂解液吸入另一干净离心管。
5. 在4℃,12000×g条件下离心15分钟。
6. 将上清吸入另一预冷的干净离心管,即得到总蛋白。
7. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
组织样本总蛋白提取:
1. 提取液准备:
每500 μl冷的总蛋白提取液中加入2 μl蛋白酶抑制剂混合物和2 μl磷酸酶抑制剂混合物,混匀后置冰上备用。
2. 取50-100 mg组织样本,用PBS洗干净,然后用手术剪刀剪碎,加入500 μl总蛋白提取液,用组织匀浆器/匀浆机匀浆至无明显肉眼可见固体。
3. 将组织匀浆吸入一预冷的干净离心管中,在4℃条件下振荡10-20分钟。
4. 在4℃,10000-14000×g条件下离心15分钟。
5. 将上清吸入另一预冷的干净离心管,即得到总蛋白。
6. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
1.蛋白浓度低?
处理部分组织样本时可能没有裂解完全,导致蛋白浓度低。只要适当延长试剂A的处理时间即可。最好在持续振荡的条件下处理,没有振荡器也可间隔几分钟用吸头吹打混匀。
2.用什么方法定量蛋白?
建议用BCA法。不适合用Bradford法,因为试剂A中含有干扰Bradford法的组份,导致定量不准。如果已经进行过透析处理或者用脱盐柱改换过缓冲体系,则可以用Bradford法定量。
3.提取时出现胶状沉淀?
蛋白提取液处理产物中有时会出现少量透明胶状物,属正常现象。该透明胶状物为含有基因组DNA等的复合物。不检测和基因组DNA结合特别紧密的特定蛋白的情况下,可以直接离心取上清进行后续实验即可;如果需要检测和基因组结合特别紧密的蛋白,则可以通过超声处理,300w/10秒间隔10秒,超声3分钟,随后离心取上清用于后续实验。检测一些常见的转录因子,例如NF-kappaB、p53等时,不必进行超声处理。
【求助】新手 请问western-blot测NF-KB、FLT3是用总蛋白提取试剂盒吗
xungufeng820 各位大侠: 小弟是新手,师兄们也没做过的,不知western-blot测NF-KB、FLT3是用总蛋白提取试剂盒吗?急盼回复!万分感谢! snowxyh 我用过总蛋白提取试剂盒提蛋白,之后western-blot检测NF-KB,但是感觉这样得到的蛋白浓度很稀,需要比较大的上样量才能检测出来,个人感觉,还是用传统的细胞匀浆裂解,离心提取上清,这样得到的蛋白浓度大,做试验结果好
真香!用 qPCR 做外泌体研究,南京医科大学拿下 41 分 SCI
。 2)RNA 提取 外泌体 RNA 可以用专用的外泌体 RNA 提取试剂盒提取,也可以用 Trizol 法提取,建议 Trizol 与外泌体的体积比不小于 4:1(也可以用 Trizol 直接裂解外泌体沉淀)。 具体操作:取 200 μl 外泌体于 1.5 ml EP 管中,加入 800 μl Trizol 试剂,充分混合,裂解 10 min,12000 rpm 离心 10 min 取上清。 3)反转录 采用 Umibio 4× 预混型快速逆转录试剂盒:适用于长片段 RNA(如 mRNA、LncRNA
器,细胞膜组分等。 3. 根据实验目的,目标蛋白分子量及蛋白定位,设计合理的对照及上样顺序,并选择合适的内参,确认上样量。 例如:验证目标蛋白在胞质胞核中易位的情况,首先将样品进行胞质和胞核蛋白分离,可设定总蛋白为对照组,胞质与胞核蛋白样品应同时上样到一块胶中保证 WB 所有条件一致,才可说明蛋白表达量的差异和趋势,若在不同胶中,孵育曝光等条件无法统一,得出的结论会导致偏差。 内参选择的方向可以考虑以下四点: 1)确认样本种属来源:是哺乳动物还是植物还是其他 2)分子











