角度可调360度旋转大小鼠解剖台 小鼠手术台小鼠保温手术台

小鼠解剖注射实验技术

头在体内旋转一圈再拔出，此举是通过旋转针头带动肌肉旋转，封闭体内针孔，避免拔针后出血。练习完活体腹腔注射后，就要杀死小鼠，进行尾部静脉注射练习。 这次实验所用的杀死小鼠的方法是脱臼法：将小鼠放在蜡盘内，左手拇指和食指按住小鼠的颈椎，右手用力拉它的尾巴（一定要按住，并且用猛力拉，这样可以减轻它的痛苦）。由于颈椎第一节与颅骨脱臼，造成脊髓横断，小鼠可以迅速的死去。但是大多数小鼠会在脑死亡后仍然存在下肢抽搐等症状，此为正常现象，不必担心。成功的杀死小鼠后，就要练习尾部静脉注射了。小鼠尾部的皮肤非常

实验动物尿液采集的标准操作规程(SOP)

关键词：尿液采集 操作规程目的：采集各种实验动物的尿液,以用于实验主体内容：常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(一)代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。动物排便时，可以通过笼子底部的大小便分离漏斗将尿液与粪便分开，达到采集尿液的目的。由于大、小鼠尿量较少，操作中的损失和蒸发，各鼠膀胱排空不一致等原因，都可造成较大的误差，因此一般需收集5小时以上的尿液，最后取平均值。(二)导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上。由尿道插入导尿

生物样品的采集及实验动物的解剖和脏器系数测定标准操作规程(SOP)

，或将尾血直接滴入容器内。采血完毕用干棉球压迫止血。亦可不剪尾，用7~8号注射针头连上注射器直接刺破尾静脉采血。② 眼眶静脉丛采血：当需用中等量的血液，而又避免动物死亡时采用本法。左手拇指及食指紧紧握住大鼠或小鼠颈部，压迫颈部两侧使眶后静脉丛充血，但用力要恰当，防止动物窒息死亡。右手持玻璃毛细管从右眼或左眼内眦部以45°角刺入，刺入深度小鼠约2～3mm, 大鼠4～5mm。若遇阻力稍后退调整角度后再刺入，如穿刺适当，血液能自然流入毛细管内。得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，拔出毛细管，用干棉球压迫