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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
999
- 供应商:
百生跃(Bioleaper)
- 英文名:
CHO cell supplement B
- 规格:
500mL
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文献和实验基分批培养表达 MAb 的 CHO 细胞(图 1A 和 B)。与先前的研究一致,渗透压升高导致活细胞浓度降低和 qp 升高(图 1C 和 D),最终 MAb 浓度几乎没有总体变化。在文献中,很少有报道研究高渗透压对 CHO 补料批次培养的影响,结果各不相同。一组报告说,通过逐步增加 GS-NS0 骨髓瘤细胞补料批次培养的渗透压,提高了生产率。为了利用增加的渗透压的效果,因此可能优选的是缓慢增加培养物的渗透压,首先允许较高的细胞生长速率(在较低的渗透压水平下),然后随着渗透压的增加,在培养的后期增加
非整倍体,原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化,融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。因此,如果观察到转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复最佳结果。 04细胞铺板密度 用于转染的最佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。因转染试剂对细胞有毒害作用,细胞太少,容易死。一般转染时,贴壁细胞密度为70%-90%,悬浮细胞密度为2-4×106细胞
物组的相对值。计算公式见(1): A=B/C×100%------------------------------------------(1) 式中:A—相对集落形成率,%;B—受试物组集落形成率,%;C—溶媒对照组集落形成率,%。 6、突变体的选择和集落形成率的测定 表达培养结束后,消化细胞,分种,每组5个皿,每皿接种200个细胞,不加6-TG,7d后固定,Giemsa染色,统计每皿集落数,计算集落形成率。同时另做突变频率测定,每组5个皿,每皿接种2×105个细胞,待细胞贴壁后,按照千分
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