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海藻糖合成酶(TS)科研专用测试盒/可见分光光度法

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  • 2025年07月11日
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      低温保存

    • 保质期

      6个月

    • 英文名

      TS测试盒

    • 库存

      664

    • 供应商

      上海机纯实业有限公司

    • 规格

      50管/24样

    产品细节图片1

    注    意:正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
    测定意义:
    海藻糖是功能性低聚糖,具有非还原性、保湿性、热酸稳定性、抗冻结性等特性,是细胞在不良环境条件下产生的一种重要的抗逆应激物之一,它对生物大分子和生物体组织有着非特异性的保护作用。海藻糖合成酶(Trehalose Synthase)催化麦芽糖合成海藻糖,是海藻糖生物合成的关键途径之一。

    测定原理:
    TS 催化麦芽糖产生海藻糖,使用糖化酶分解剩余麦芽糖为葡萄糖,通过葡萄糖氧化酶法测定葡萄糖含量,按照麦芽糖减少的量表示海藻糖合酶活性。

    需自备的仪器和用品:
    分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

    试剂的组成和配制:
    提取液:液体 60mL×1 瓶,4℃保存;
    试剂一:液体 6mL×1 瓶,4℃保存;
    试剂二:液体 6ml×1 瓶,4℃保存,充分混匀,如有沉淀,静置后取上层清液使用;试剂三:液体 25ml×1 瓶,4℃避光保存;试剂三:液体 25ml×1 瓶,4℃避光保存;

    样品测定的准备:
    1、细菌或细胞的处理:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3S,间隔 10S,重复 30 次);8000g,4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

    2、组织的处理:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),冰浴中匀浆。8000g ,4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

    产品细节图片2

    TS 活力计算:
    1、标准条件下测定回归方程为 y = 0.747x - 0.0014,R2 = 0.9999;x 为标准品浓度(μmol/mL),y为吸光值。
    2、按照蛋白浓度计算单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟催化 1nmol 麦芽糖产生 1nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。
    TS 活力(nmol/min/mg prot)=(    A+0.0014) ÷0.747×V 反总÷(V 样×Cpr)÷T×1000÷2=16.7×(    A+0.0014) ÷Cpr
    3、按样本鲜重计算
    单位的定义:每 g 组织每分钟催化 1nmol 麦芽糖产生 1nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。 TS 活力(nmol/min/g 鲜重)=( A+0.0014) ÷0.747×V 反总÷(W ×V 样÷V 样总) ÷T×1000÷2 =16.7×( A+0.0014)÷W
    4、按细菌或细胞密度计算
    单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟催化 1nmol 麦芽糖产生 1nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。 TS 活力(nmol/min/104 cell)=( A+0.0014) ÷0.747×V 反总÷(500 ×V 样÷V 样总) ÷T×1000÷2 =0.033× ( A+0.0014)V 样:加入样本体积:0.1mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;V 反总:反应体系总体积,0.3mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万;T:反应时间,120min;1000,μmol 到 nmol 转换系数;2,1 分子麦芽糖转化为 2 分子葡萄糖。

     

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      块分离(散)成细胞悬液的方法有多种,最常用的是机械解离细胞、酶学解离细胞以及螯合剂解离细胞。 从原代组织中获得单细胞悬液的一般方法是酶解聚。细胞暴露在中的时间要尽可能的短,以保持最大的活性。下列步骤可以解聚整个组织,获得较高产量的有活性细胞。 1、胰蛋白酶 (Trypsin) 在去除不需要的组织后,使用无菌的解剖刀和剪子把剩余的组织切成3~4mm小片,通过悬浮在无钙镁的平衡盐溶液中清洗组织碎片。让组织碎片沉淀,去除上清液。重复清洗2到3次。 将盛有组织碎片的容器置于冰上,去除

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