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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 供应商:
上海晶抗生物工程有限公司
- 库存:
797
- 样本:
来电咨询
- 标记物:
详见说明书
- 适应物种:
来电咨询
- 应用:
仅供科研研究使用
- 检测方法:
可见分光光度法
海藻糖合成酶(TS)测试盒_可见分光光度法
测定方法:可见分光光度法
产品规格:50管/24样
储存条件:低温保存
注 意:正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
海藻糖是功能性低聚糖,具有非还原性、保湿性、热酸稳定性、抗冻结性等特性,是细胞在不良环境条件下产生的一种重要的抗逆应激物之一,它对生物大分子和生物体组织有着非特异性的保护作用。海藻糖合成酶(Trehalose Synthase)催化麦芽糖合成海藻糖,是海藻糖生物合成的关键途径之一。
测定原理:
TS 催化麦芽糖产生海藻糖,使用糖化酶分解剩余麦芽糖为葡萄糖,通过葡萄糖氧化酶法测定葡萄糖含量,按照麦芽糖减少的量表示海藻糖合酶活性。
需自备的仪器和用品:
分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
提取液:液体 60mL×1 瓶,4℃保存;
试剂一:液体 6mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:液体 6ml×1 瓶,4℃保存,充分混匀,如有沉淀,静置后取上层清液使用;试剂三:液体 25ml×1 瓶,4℃避光保存;试剂三:液体 25ml×1 瓶,4℃避光保存;
1、工作液配制:
2、临用前将试剂三和试剂四按照 1:1 的比例混合,用多少配多少。
在1mL 玻璃比色皿中加入如下试剂混匀,室温反应 30min,于 505nm 下测定吸光值 A 对照与 A 测定,
A=A 对照-A 测定。
每个测定管设一个对照管。
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文献和实验相关实验
随着他们这些显著的优点,BL/CL技术同样也有一些缺陷。从实践的观点来看,BL/CL技术与传统的分光光度测定和荧光技术相比,更容易基质的影响。当然,BL/CL检测中的化学反应会被基质中的成分影响(通常是淬灭)。此外,酶或发光蛋白也和CL底物一样,相对荧光分子不稳定。另一个限制因素是,相比分光光度和荧光测量的仪器,BL/CL检测的仪器通常的实验室中此类仪器比较少,特别是需要高灵敏度检测时,所需要的仪器通常非常贵。 随着新的生物技术工具的不断产生,BL/CL将进一步得到发展。其中一部分是对新的BL报告基因的发现
块分离(散)成细胞悬液的方法有多种,最常用的是机械解离细胞法、酶学解离细胞法以及螯合剂解离细胞法。 从原代组织中获得单细胞悬液的一般方法是酶解聚。细胞暴露在酶中的时间要尽可能的短,以保持最大的活性。下列步骤可以解聚整个组织,获得较高产量的有活性细胞。 1、胰蛋白酶 (Trypsin) 在去除不需要的组织后,使用无菌的解剖刀和剪子把剩余的组织切成3~4mm小片,通过悬浮在无钙镁的平衡盐溶液中清洗组织碎片。让组织碎片沉淀,去除上清液。重复清洗2到3次。 将盛有组织碎片的容器置于冰上,去除
技术资料海藻糖合成酶(TS)测试盒_可见分光光度法
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