Magnefy-核酸分离磁珠，NGS专用

产品介绍

Magnefy超顺磁性微粒，外层包被羧基修饰，粒径约为1um，拥有大的比表面积和高表面滴度，具有良好的磁响应参数（快速且均匀），助力您的核算分离与分析，助您获得高纯度核酸。

基于SPRI的DNA隔离

SPRI（固相载体可逆化固定法）是一种用于核酸非特异性分离的通用方法。 SPRI 结合液包含高浓度盐和 PEG，使DNA缩合沉降从而与磁珠结合。随后样品和缓冲液成分从已结合复合物中洗去，得到纯化的 DNA 用于洗脱和下游流程。 SPRI 已用于从各种样品及反应体系中分离 ss DNA 和 ds DNA；包括PCR 产物、细菌文库、血清/血液/组织、培养细胞和琼脂糖凝胶切割物。

向您推荐我们的优异的磁性微粒产品——Magnefy。Magnefy为磁性微粒法分析和分离（包括SPRI*全DNA分离）提供另一种性能优异的载体。（*固相可逆固定法，其特点为使用NaCl和PEG的混合物分离出高纯度的核酸。）

产品特点

Magnefy是粒径约为1µm的核-壳磁性微粒，其表面的外层封包被羧基修饰，具有较大的表面积和高表面滴度，可作出快速且均匀的磁响应。Magnefy可进行各种规模的生产，并适用于自动化操作。

对Magnefy进行多种压力测试，以确保它们耐受各种分子生物学实验条件而磁珠不受破坏。在不同盐溶液、pH值、胍浓度、温度及水洗的极端条件下测定颗粒的直径、聚集程度、磁分离性能和暴露的铁含量。Magnefy能承受这些极端条件及同类产品的挑战。在花费不昂贵的情况下，跟同类产品比较，Magnefy也有同样良好的DNA分离效果。

应用领域
 

超顺磁微粒广泛用于诊断和其它科研领域，用于细胞及抗体、核酸、多肽等生物分子的纯化。这种微粒带来了多种益处，使分离更为简便，并适于自动化操作。当磁性微球由具有识别功能的分子修饰后，它们能高效捕获和分离目标物。杂质样品成分可通过简单的磁分离步骤洗去。

磁性微粒也被广泛用于核酸的分离，Magnefy为磁性微粒法分析和分离（包括SPRI*全DNA分离）提供另一种性能优异的载体。（*固相可逆固定法，其特点为使用NaCl和PEG的混合物分离出高纯度的核酸。）

使用方法

程序步骤：

1)轻轻混合Magnefy磁珠，以确保在不产生气泡/泡沫的情况下获得均匀的悬浮液（例如倒置约20X）。向600µL结合缓冲液中添加55µL的Magnefy微粒，并用移液枪轻轻混匀 。

2)向30µL DNA样品中添加含Magnefy微粒的结合缓冲液，并用移液枪轻轻混匀 。

3)室温下孵育5分钟，让DNA与磁珠结合。

4)将试管置于磁性分离器中15分钟，以实现和微粒的完全结合。

5)在不扰乱由磁性分离器固定微粒颗粒的情况下，小心吸出上清液。上清液可丢弃，或保留用于更小片段的分离。

6)从磁性分离器中取出试管。添加500µL 70%乙醇并用移液枪混匀，直到磁珠充分再悬浮。

7)将试管置于磁性分离器内6分钟，并小心吸走乙醇上清液。

8)重复步骤6和7。

9)在含结合成颗粒状的微粒的试管仍留在磁铁上的情况下，通过移液枪移走乙醇。让颗粒风干5分钟，同时继续用移液枪从试管底部吸走乙醇。不得让磁珠过度干燥，以免影响DNA洗脱步骤。

10)从磁性分离器中取出试管，并向样品中添加200µL洗脱缓冲液。通过移液枪混匀操作，确保磁珠完全再悬浮。试管在室温下孵育2分钟，然后再次用移液枪混匀。

11)将试管置于磁性分离器内5分钟，或直到观察到澄清上清液。将含DNA的上清液转移到干净的试管中用于下游应用或储存（-20℃）。

规格参数
 

货号	品名	规格
26410-5	Magnefy COOH, ~1µm, 5% solids	5ml
26410-10	Magnefy COOH, ~1µm, 5% solids	10ml
26410-25	Magnefy COOH, ~1µm, 5% solids	25ml
26410-100	Magnefy COOH, ~1µm, 5% solids	100ml

客户体验

参考文献：

【1】Fisher S, Barry A, Abreu J, Minie B, Nolan J, Delorey T M, etal. (2011).A scalable, fully automated process for construction of sequence-ready human exome targeted capture libraries. Genome Biol; 12(1), R1.

【2】Meyer M, Stenzel U, Hofreiter, M. (2008).Parallel tagged sequencing on the 454 platform. Nature Protoc; 3(2), 267.

【3】Elkin CJ, Richardson PM, Fourcade HM, Hammon NM, PollardMJ, Predki PF, et al. (2001).High-throughput plasmid purification for capillary sequencing. Genome Res; 11(7), 1269-1274.

【4】Hawkins TL, O’Connor-Morin T, Roy A, Santillan C. (1994).DNA purification and isolation using a solid-phase. Nucleic AcidsRes; 22(21), 4543-4.

更多详情咨询：
上海曼博生物医药科技有限公司
MineBio Life Sciences Ltd.
www.mine-bio.com