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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
-20
- 保质期:
三个月
- 英文名:
pJQ200SK质粒载体
- 库存:
10
- 供应商:
晶风生物
- 规格:
约0.5ug
产品规格:0.5ug质粒干粉(实际规格可能会有出路,具体规格价格请和客服核实)
亲爱的科研工作者,感谢您信任晶风生物,我们致力于为大家分享质优价适的质粒,受各种因素影响,我们只保证质粒的关键序列测序正确,不能保证实验效果。请您收到质粒后请务必先转化,再挑取单菌落扩增,不要直接使用。如果您需要即用的大包装质粒或病毒颗粒,可委托我们制备,性价比更高。
pJQ200SK质粒载体扩增流程
收到产品后,请先根据产品管壁标签来判断产品形式,并在扩增前准确查找该质粒菌株的抗性、感受态和培养温度。
1、质粒干粉(常温运输,存于-20度,90天保质期,请务必转化挑单克隆培养,不要直接使用和测序)
①收到质粒干粉后请先5000rpm离心1min,再加入20μl ddH2O去离子水溶解质粒;
②取1支100μl 感受态于冰上解冻10min,加入2μl质粒,再冰浴30min后,42℃热激60s,不要搅动,再冰浴2min;(从第二步开始均要在超净工作台中无菌操作)
③加入900μl无抗的LB液体培养基,180rpm震荡37℃培养45min;
④6000rpm离心5min,仅留100μl上清液重悬细菌沉淀,并涂布至目标质粒抗性的LB平板上;(可使用本平台的平板涂布专用玻璃珠进行涂布,可以比传统涂布方法获得更多转化子)
⑤将平板正向培养1h,再倒置37℃培养14h。如果要求是30度则培养20h,(菌落过多则将质粒稀释后再转化。没有菌落则加入10μl质粒转化。另不要直接转表达感受态,要先转克隆感受态,重提质粒后再导入表达感受态)
⑥挑取单菌落至LB液体培养基中,加入对应抗生素,220rpm震荡培养14h,根据实验需要和质粒提取试剂盒说明书提取质粒。
2、甘油菌种(冰袋运输,存于-80℃,保质期90天,请务必划线挑单克隆培养)四区划线后挑单菌落培养,酵母菌需要先液体复苏再四区划线,再挑单菌落液体培养。
3、穿刺菌种(冰袋运输,存于4℃,保质期7天)穿刺接种,液体培养后四区划线,再挑单菌落液体培养。
4、菌落平板(冰袋运输,存于4℃,保质期7天)直接挑取单菌落至液体培养基中。
5、液体质粒(冰袋运输,存于-20℃,保质期90天)单独提取的液体质粒收到后可直接使用。
6、滤纸质粒(常温运输,存于-20度,90天保质期,请务必转化挑单克隆培养,不要直接使用和测序)
收到货后将滤纸画圈部分剪下放入EP管中,加100ul无菌水将滤纸浸湿并浸泡5min,吸取5ul质粒转化,离心全涂。
转化图片:

pJQ200SK质粒载体提取步骤:(本步骤仅做示例,非该产品实际提取步骤)
实验原理:
碱裂解法提取质粒是根据共价闭合环状质粒DNA 与线性染色体DNA 在拓扑学上的差异来分离它们。在pH 值介于12.0 ~12.5 这个狭窄的范围内,线性的DNA 双螺旋结构解开而被变性,尽管在这样的条件下,共价闭环质粒DNA 的氢键会被断裂,但两条互补链彼此相互盘绕,仍会紧密地结合在一起。当加入pH 4.8 的乙酸钾高盐缓冲液恢复pH 至中性时,共价闭合环状的质粒DNA 的两条互补链仍保持在一起,因此复性迅速而准确,而线性的染色体DNA 的两条互补链彼此已完全分开,复性就不会那么迅速而准确,它们缠绕形成网状结构,通过离心,染色体DNA与不稳定的大分子RNA ,蛋白质-SDS 复合物等一起沉淀下来而被除去。
二、操作步骤:
1. 准备20ml灭菌过的培养管,编号,分别加入8ml LB培养基,再加入8µl 相应抗生素,可适量多加;
2. 用10µl 白色枪头挑取挑取单个菌落至培养管中,37℃震荡过夜(274rpm);
3. 取2ml过夜培养的菌液加入离心管中,室温10000rpm离心2min,去上清;(可重复步骤2,直至菌液离心完)(去上清时用纸吸一下)
4. 向留有菌体沉淀的离心管中加入250µl Buffer P1(含RNase A),使用移液枪充分混匀,悬浮菌体菌体;
5. 向离心管中加入250µl Buffer P2,温和地上下颠倒混匀4~6次,获得澄清的裂解液;(剧烈混合会使剪切染色体DNA,降低质粒纯度)
6. 向离心管中加入350µl Buffer N3, 立即温和地上下颠倒混匀4~6次,此时出现白色絮状沉淀。室温10000rpm离心15min;
7. 小心将步骤6中所得的上清液转移至洁净的吸收柱中。要保证没有吸入沉淀和细胞碎片。室温10000rpm离心1min,至裂解物完全通过吸收柱,倒掉收集管中的废液;
8. 向吸附柱中加150µl Buffer PB,10000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液;
9. 向吸附柱中加400µl Buffer PW(检查是否加入无水乙醇),10000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液。再空离一次,2min(此时可以加热 Buffer EB,65~70℃);
10. 将吸附柱置于一个新的离心管中,打开盖子,吹风4min左右(确保乙醇被去除,乙醇会影响下面的步骤);
11. 向吸附柱的吸附膜中间部位加90µl Buffer EB(pET系列拷贝数低,加EB 70μl即可),室温静置2min。10000rpm离心1min;
12. 把液体倒回吸附柱,在10000rpm离心1min;
13. 混合质粒至一个离心管中,做好标记,开盖室温放置两小时左右。-40℃保存质粒。

三、注意事项:
1.使用之前,把试剂盒中的一小管RNA酶加入Buffer P1, 4℃保存。
2.Buffer EB在65~70℃水浴预热,可以增加提取效率。
更多质粒载体,请咨询我公司:pJQ200SK质粒载体
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文献和实验,可以通过合适的方法转染宿主细胞以回收具有感染性的病毒粒子,大体上有两种途径可达此目的。 3. 1 将全长cDNA 克隆到含有强启动子的质粒载体上,在体外用RNA 聚合酶转录系统进行体外转录得到感染性转录本(RNA) ,再用转录产物感染宿主 细胞,回收感染性病毒粒子。这种方法中启动子的选择是很重要的,因为它将影响到体外转录本的产量和完整性。人们经常使用的启动子有: T7 , T3 ,Sp6 等强的启动子。在使用启动子的策略上,既可以把全长cDNA 序列克隆到含有这些启动子的载体中,又可以在合成
,与构建文库用的同一批cDNA加上EcoRI人工接头后,与经内切酶EcoRI酶切并去磷酸化的质粒载体Bluescript SK相连,并转化感受态细菌TG1,同样铺平板加入IPTG和X-Gal,37℃培养过夜,次日挑出9个白色细菌斑,分别接种入5 mL液体LB培养基中培养,小量提取质粒,并用内切酶EcoRI酶切后,进行琼脂糖凝胶电泳以鉴定切出片段的大小。(9)对上述构建的的cDNA库进行扩增,取105个噬菌体转染宿主菌E.coli Y 1090,铺板,保温后,加15MLSM,室温振荡2小时,回收SM
作物。在燕麦中,至今尚无 RNA 沉默的研究报道。RNAi 作为一种研究植物功能基因组的工具,确切地说,第一次大规模地使用是在拟南芥和玉米研究中,超过 100 个目的基因被沉默[41]。研究的关键一直集中在设计和构建可用的质粒载体,以便引发 RNAi 的外源基因能稳定地整合到染色体组中。本章将介绍目前在大麦和小麦中,下调基因表达所使用的 RNAi 和 VIGS 等多种方法。相对而言,虽然 RNA 基因沉默已是一项广泛应用的技术,但是,在植物研究中对其进行优化的报道相对较少。一段给定的序列能否产生 RNA
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