标签: 实验动物接种 病毒学检验第三章
实验动物接种途径可根据病毒感染特性和检测目的来确定,并根据病毒选择实验动物种类和病毒接种量。来源:《病毒学检验》
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皮下接种。注射时轻轻捏起皮肤,手持注射器将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下,大鼠在背部或侧下腹部;豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位;兔在背部或耳根部注射;狗多在大腿外侧注射。皮下接种多用于观察动物病毒感染后的免疫学指标。
腹腔接种。固定动物,消毒皮肤,在左或右侧腹部将针头刺入皮下,沿皮下向前推进约0. 5 cm, 再使针头与皮肤呈 45°夹角刺入腹腔,回抽无肠液、尿液后,缓缓注射。大小鼠接种多用此方法。可用于病毒感染及感染后免疫指征的观察,或作为抗病毒的给药途径。
静脉接种。可造成病毒全身性感染,可观察病毒的致病性或机体对病毒的清除机制。
(1) 小鼠、大鼠的静脉注射:常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有 3 根,左右两侧和背侧各 1根.两侧尾静脉比较容易固定,常被采用。
(2) 豚鼠的静脉注射:一般采用前肢皮下静脉注射。
(3) 兔的静脉注射:一般采用外耳缘静脉注射。
鼻腔接种法。动物乙酰麻醉,固定动物使头部仰起,经注射器将接种物滴入动物鼻腔,接种量小鼠 0. 03-0. 05 ml, 大鼠 0. 05~0. 1 ml 。
角膜接种法。乙醚或 5% 可卡因局部麻醉家兔,细针尖轻划角膜,划痕与眼裂平行,约三道。接种液滴加 2~3 滴,接种后 48~72h 观察结果。
颅内接种法。将临床标本或特定的病毒直接接种于动物脑内,使动物形成实验性中枢神经系统感染。
(1) 小白鼠:接种时用拇指与食指固定鼠头,消毒注射部位,于眼后角、耳前线和颅中线构成的三角区域中间进行注射,进针 2-3 mm。注射量乳鼠 0. 02 ml, 成年鼠 0. 03 ml 。
(2) 豚鼠与家兔:颅中线旁约 5 mm 平行线与经动物瞳孔横线交叉部位注射。去毛,消毒注射部位,固定皮肤,钻头刺穿颅骨,拔钻后沿钻孔进针。选 25 或 26 号针头,进针深度约 4-10 mm, 注射量为 0. 1-0. 25 ml。操作在麻醉下进行。
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