糖原合成酶激酶-3抑制剂CHIR99021减少肩袖撕裂后的脂肪浸润和肌肉萎缩:体外实验和体内小鼠模型

The Glycogen Synthase Kinase-3 Inhibitor CHIR99021 Reduces Fatty Infiltration and Muscle Atrophy After Rotator Cuff Tears: An In Vitro Experiment and In Vivo Mouse Model

作者信息Pu Zhang, Meng Zhou, Yiming Zhu, Jianhao Xie, Ziqi Huo, Dan Zhang, Pinxue Li, Jianxun Guo, Guangping Li, Xu Li, Renxian Wang, Chunyan Jiang
PMID39989144
发布时间2025-04
DOI10.1177/03635465251319549

实验完整度

高

包含患者样本RNA测序、细胞实验(FAPs和C2C12)、体内小鼠模型,并进行了功能验证(成脂/成肌分化)和机制验证(通路分析),证据层级丰富。

主要模型

小鼠FAPs细胞模型 C2C12成肌细胞系 小鼠肩袖撕裂模型 人冈上肌活检样本

重点核对

患者样本Goutallier分级(0级 vs 2级) CHIR99021浓度(3μM用于细胞实验,15mg/kg腹腔注射用于动物) 处理时间(细胞3或5天,动物1和4周) 动物分组(vehicle vs CHIR99021,n=20/组) 检测指标(油红O染色面积、肌纤维横截面积、肌肉重量损失、mRNA表达)

摘要

背景:肩袖撕裂(RCT)可导致炎症、肌肉萎缩和不可逆的脂肪浸润,导致不良的临床结果。抑制肩袖肌肉脂肪浸润的有效治疗方法仍然有限。目的:通过RNA测序鉴定与脂肪浸润相关的通路,并基于RNA测序鉴定的Akt/GSK-3通路富集,评估糖原合成酶激酶-3(GSK-3)抑制剂CHIR99021的治疗潜力。研究设计:对照实验室研究。方法:对6例慢性全层RCT患者的冈上肌活检标本进行RNA测序。将纤维脂肪祖细胞(FAPs)或C2C12成肌细胞与不同剂量的CHIR99021培养,以评估其对成脂或成肌分化的影响。RNA测序鉴定了用或不用CHIR99021处理的FAPs中的细胞通路。通过分离冈上肌腱建立小鼠RCT模型,然后腹腔注射CHIR99021或不用CHIR99021治疗。在术后1周和4周通过组织学和基因表达分析评估肌肉萎缩和脂肪浸润。结果:RNA测序分析发现,Akt/GSK-3信号通路在脂肪堆积最少的患者样本和FAPs中显著上调。CHIR99021抑制FAPs的成脂分化,促进C2C12细胞的成肌分化。在小鼠RCT模型中,与载体治疗的小鼠相比,CHIR99021治疗的小鼠冈上肌油红O染色减少,横截面积增大,肌肉重量损失减少。基因表达分析显示,术后1周和4周肌生成增加,脂肪浸润减少,术后1周CHIR99021组IL-6和IL-15的表达水平较对照组升高。结论:Akt/GSK-3通路在低脂肪积累的冈上肌样本和FAPs中富集,突出了其作为治疗靶点的潜力。GSK-3抑制剂CHIR99021在体外和体内小鼠模型中均可减轻RCT后的脂肪浸润和肌肉萎缩。临床相关性:GSK-3抑制剂CHIR99021显示出治疗RCT后肌肉变性的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肩袖撕裂后脂肪浸润和肌肉萎缩的分子机制,以及GSK-3抑制剂CHIR99021能否有效抑制这些退行性变化。
核心机制
Akt/GSK-3/β-catenin通路在脂肪浸润中发挥关键作用;CHIR99021抑制GSK-3活性,稳定β-catenin,减少PPAR-γ表达,从而抑制FAPs成脂分化并促进肌生成。
主要证据
人样本RNA测序显示Akt/GSK-3通路富集;CHIR99021在体外抑制FAPs成脂并促进C2C12成肌;在体内小鼠RCT模型中减少油红O染色面积、增加肌纤维横截面积、减少肌肉重量损失,并上调肌生成相关基因。
研究意义
靶向Akt/GSK-3/β-catenin通路或为治疗肩袖撕裂后肌肉退变提供新策略,CHIR99021可能作为潜在治疗药物,但需进一步临床研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者样本转录组分析

鉴定与脂肪浸润相关的信号通路

对6例慢性全层RCT患者的冈上肌活检标本进行RNA测序,根据Goutallier分级分为0级和2级,进行差异表达基因和KEGG通路富集分析。

2

CHIR99021对FAPs成脂分化的体外作用

检验CHIR99021是否能抑制FAPs的成脂分化

从小鼠肌肉中分选FAPs,在成脂诱导培养基(AIM)中用不同浓度CHIR99021处理3天,进行油红O染色、细胞活力检测、RT-qPCR和Western blot检测。

3

CHIR99021对C2C12成肌分化的体外作用

检验CHIR99021是否能促进成肌分化

C2C12细胞用3μM CHIR99021处理5天,通过RT-qPCR检测成肌基因(肌细胞生成素、Myf5、desmin)和Western blot检测肌球蛋白重链。

4

CHIR99021处理的FAPs转录组分析

揭示CHIR99021抑制FAPs成脂分化的机制

对在GM、AIM或含3μM CHIR99021的AIM中培养3天的FAPs进行RNA测序,分析差异表达基因和KEGG通路富集。

5

小鼠RCT模型的建立及CHIR99021体内治疗

评估CHIR99021在体内对脂肪浸润和肌肉萎缩的影响

对小鼠进行冈上肌腱切断术建立RCT模型,术后3天开始每日腹腔注射CHIR99021(15mg/kg)或载体,分别于术后1周和4周取材,进行组织学染色(HE、油红O、免疫荧光)和RT-qPCR检测。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
II型胶原酶Thermo Fisher Scientific--
分散酶Thermo Fisher Scientific--
基质胶Corning--
高糖DMEM培养基----
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
胰岛素----
地塞米松----
3-异丁基-1-甲基黄嘌呤----
CHIR99021Selleck Chemicals--
二甲基亚砜----
TRIzol试剂Invitrogen--
PrimeScript第一链cDNA合成试剂盒Takara6110A
TB Green Premix Ex Taq IITakaraRR420A
LightCycler 480 II型实时荧光定量PCR仪Roche--
RIPA裂解液----
BCA蛋白定量试剂盒Cell Signaling Technology--
PVDF膜----
抗β-微管蛋白抗体Solarbio--
抗肌球蛋白重链抗体Santa Cruz BiotechnologyB-5
抗非磷酸化(活性)β-catenin抗体Cell Signaling Technology--
增强化学发光试剂盒Millipore--
油红OSigma-AldrichO0625
Triton X-100Solarbio--
抗α-SMA抗体Invitrogen14-9760-82
DAPISigma-AldrichD9542
抗perilipin抗体Cell Signaling Technology3470
抗laminin抗体Sigma-AldrichL9393
抗PDGFRα抗体Cell Signaling Technology3174s
倒置显微镜DMi8Leica--
RNAprep纯组织试剂盒TiangenDP431
RNA 6000 Nano试剂盒Agilent Technologies--
VAHTS Universal V6 RNA-seq文库制备试剂盒VazymeNR604-01/02
NovaSeq 6000 S4测序系统Illumina--
APC标记抗PDGFRα抗体BioLegend135908
PE标记抗CD31抗体BioLegend160204
FITC标记抗CD45抗体BioLegend157214
PE-Cyanine7标记抗Sca-1抗体BioLegend108114
FACSAria III流式细胞分选仪BD Biosciences--
100μm和70μm细胞过滤器Corning--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者样本采集与分组
纳入标准(慢性全层撕裂)、Goutallier分级、活检位置(距肌腱连接处2-3cm)、样本量(6例,每组3例)
阅读提示:Methods - Patient Selection and Biopsy; Figure 1A
细胞分离与培养
小鼠品系(C57BL/6J)、FAPs分选标志物(PDGFRα+/Sca-1+/CD31-/CD45-)、消化酶浓度和时间(0.2%胶原酶II 90分钟,0.4%分散酶30分钟)
阅读提示:Methods - Isolation of FAPs From Mouse Muscle
CHIR99021处理
细胞实验最佳浓度(3μM)、动物实验剂量(15mg/kg,腹腔注射)、给药起始时间(术后3天)
阅读提示:Methods - Cell Culture, Adipogenic Differentiation, and Treatment; Methods - Animals and Surgical Procedures
动物模型建立
手术步骤(切断冈上肌腱)、动物数量(n=20/组)、随机分组、术后时间点(1周和4周)
阅读提示:Methods - Animals and Surgical Procedures; Figure 5A
结果评估
检测指标(油红O染色、肌纤维横截面积、肌肉重量损失、基因表达)、定量方法(ImageJ软件)、统计方法(Student t检验和单因素方差分析)
阅读提示:Methods - Oil Red O Staining, Immunohistochemistry, Statistical Analysis; Results