TYK2在tau蛋白病小鼠模型中调控tau水平、磷酸化和聚集

TYK2 regulates tau levels, phosphorylation and aggregation in a tauopathy mouse model

作者信息Jiyoen Kim, Bakhos Tadros, Yan Hong Liang, Youngdoo Kim, Cristian Lasagna-Reeves, Jun Young Sonn, Dah-Eun Chloe Chung, Bradley Hyman, David M Holtzman, Huda Yahya Zoghbi
PMID39528671
发布时间2024-12
DOI10.1038/s41593-024-01777-2

实验完整度

实验涵盖细胞模型、原代神经元、多种小鼠模型及人脑样本,包含功能验证(敲低/过表达)和机制验证(磷酸化、自噬、聚集)。

主要模型

人神经母细胞瘤细胞系(BE(2)-C、SH-SY5Y)和HEK293T细胞 原代培养小鼠皮层神经元 P301S tau转基因小鼠(PS19)及腺相关病毒(AAV8)介导的tau过表达小鼠模型 人类AD患者脑组织样本

重点核对

TYK2敲低或抑制是否降低tau水平(细胞和脑组织) TYK2是否在Tyr29位点磷酸化tau(体外激酶实验和免疫沉淀) Tyr29磷酸化是否通过抑制自噬稳定tau(泛素化分析、自噬抑制) TYK2是否促进tau聚集(细胞聚集实验和体内模型) Tyk2敲低是否减轻tau病理和胶质增生(PS19小鼠模型)

摘要

阿尔茨海默病是至少26种以神经元、胶质细胞或两者中tau阳性积聚为特征的疾病之一。然而,目前仍不清楚哪些修饰导致可溶性tau转化为不溶性聚集体。我们之前进行的遗传筛选确定酪氨酸激酶2(TYK2)为tau水平的候选调控因子。在这里,我们验证了这一发现,并发现TYK2在人类细胞中磷酸化tau的酪氨酸29(Tyr29)位点,导致其稳定并促进其聚集。我们发现TYK2介导的Tyr29磷酸化干扰了tau的自噬清除。我们还表明,TYK2介导的Tyr29磷酸化促进了P301S tau转基因小鼠中病理性tau的积累。此外,在tau蛋白病小鼠模型中,敲低Tyk2降低了总tau和致病性tau水平,并减轻了胶质增生。总的来说,这些数据表明,部分抑制TYK2可能是降低tau水平和毒性的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TYK2是否通过磷酸化tau蛋白的Tyr29位点调控tau水平、磷酸化和聚集,并影响tau蛋白病病理?
核心机制
TYK2磷酸化tau的Tyr29位点,抑制自噬介导的tau降解,从而稳定tau并促进其聚集。
主要证据
在细胞和小鼠模型中,TYK2过表达或敲低影响tau水平;Tyr29磷酸化增强tau聚集;在P301S小鼠中敲低Tyk2减少总tau、病理tau和胶质增生。
研究意义
部分抑制TYK2可降低tau水平和毒性,可能成为阿尔茨海默病和其他tau蛋白病的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证TYK2对tau水平的调控

验证TYK2是否为tau水平的调控因子。

在人类神经母细胞瘤细胞中通过shRNA敲低或小分子抑制剂抑制TYK2,检测tau水平;过表达TYK2检测tau水平。

2

验证TYK2与tau的相互作用及磷酸化

确定TYK2是否与tau结合并磷酸化tau,及磷酸化位点。

进行免疫共沉淀验证结合,体外激酶实验检测磷酸化,通过突变Y29F和intrabody验证位点。

3

研究Tyr29磷酸化对tau稳定性的影响

探究TYK2介导的Tyr29磷酸化是否稳定tau,并揭示机制。

在原代神经元中诱导表达tau WT或Y29F,去除DOX后追踪tau降解;检测泛素化类型和自噬/蛋白酶体抑制的影响。

4

验证TYK2促进tau聚集

证实TYK2介导的Tyr29磷酸化促进病理性tau聚集。

在HEK293T细胞中表达tau P301S或Y29F/P301S,加入tau种子,检测不溶性tau聚集;使用YFP融合蛋白和FRET生物传感器细胞。

5

验证体内TYK2对tau病理的影响

在体内模型中验证TYK2对tau磷酸化和聚集的影响。

通过P0-ICV注射AAV8表达tau P301S或Y29F/P301S及TYK2KD,检测脑内tau病理;在PS19小鼠中敲低Tyk2观察病理改善。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
Opti-MEM培养基Gibco31985070
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668-500
TransIT-293转染试剂Mirus Bio--
德卡伐替尼----
多西环素----
氯喹----
MG132蛋白酶体抑制剂----
原钒酸钠----
TNO155(PTPN11抑制剂)----
Zlc002(CAPON抑制剂)----
TYK2抗体Abcamab303500
磷酸化TYK2 (pY292)抗体Abcamab138394
PHF1抗体Peter Davies--
tau抗体Abcamab80579
tau抗体AgilentA0024
HA抗体BioLegend901514
Flag (M2)抗体Sigma-AldrichF3156
磷酸化tau (pT205)抗体Thermo Fisher Scientific44-738G
寡聚tau抗体Merck MilliporeABN454-I
磷酸化酪氨酸抗体Merck Millipore05-321
FYN抗体Cell Signaling Technology4023
Vinculin抗体Sigma-AldrichV9131
GAPDH抗体ImmunoChemical2-RGM2
GFAP抗体Norus Biologicals53809
IBA1抗体Wako019-19741
磷酸化tau (pTyr29)抗体----
磷酸化tau (pTyr18)抗体MediaMabsMM-0194-P
磷酸化tau (pS396)抗体Cell Signaling Technology9632S
DUSP1抗体ABclonalA2919
β-连环蛋白抗体Cell Signaling Technology8480
驴抗兔IgG Alexa Fluor 555Thermo Fisher ScientificA-31572
驴抗山羊IgG Alexa Fluor 594Jackson ImmunoResearch705-585-003
驴抗兔IgG IRDye 800CWLI-COR Bioscience926-32213
山羊抗兔IgG IRDye 680RDLI-COR Bioscience926-68071
山羊抗小鼠IgG IRDye 800CWLI-COR Bioscience926-32210
山羊抗小鼠IgG IRDye 680RDLI-COR Bioscience926-68072
pAAV-YFP-miRE载体----
pLenti-EF1a载体----
pAAV-鸡β-肌动蛋白启动子载体----
psPAX2包装质粒----
pMD2.G包膜质粒----
Lenti-X浓缩液Clontech631231
TransIT-293转染试剂Mirus Bio--
NB-B27培养基Invitrogen--
Neurobasal plus培养基Invitrogen--
B27添加剂Invitrogen--
谷氨酰胺添加剂Invitrogen--
青霉素-链霉素Invitrogen--
AAV8病毒----
蛋白酶抑制剂混合物Roche--
磷酸酶抑制剂混合物----
RNeasy小型试剂盒Qiagen--
BCA蛋白定量试剂盒----
tau ELISA试剂盒----
4-12% Bis-Tris凝胶Invitrogen--
硝酸纤维素膜Bio-Rad1620145
Odyssey CLx红外成像系统LI-COR--
Hoechst染料----
Cytation5细胞成像微孔板检测仪BioTek--
滑动切片机LeicaSM2010 R
荧光显微镜Carl Zeiss--
共聚焦显微镜Carl Zeiss--
BD LSRFortessa流式细胞仪BD Biosciences--
GraphPad Prism 9.0软件GraphPad Software--
Image Studio软件5.2版LI-COR Biosciences--
Fiji软件----
BD FACSDiva软件BD Biosciences--
ZEN显微成像软件Carl Zeiss--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
TYK2敲低/抑制对tau水平的影响
细胞类型、TYK2敲低方式(shRNA序列、抑制剂浓度)、处理时间、tau检测方法
阅读提示:Methods: Cell culture, transfection, infection and drug treatment; Extended Data Fig. 1
TYK2磷酸化Tyr29验证
细胞系、TYK2和tau表达质粒、突变位点(Y29F)、intrabody(HJ8.5)、检测抗体
阅读提示:Methods: Immunoprecipitation, IB analysis; Fig. 2
Tyr29磷酸化对tau稳定性的影响
原代神经元培养条件、DOX浓度和处理时间、时间点、TYK2表达方式
阅读提示:Methods: Cell culture, transfection, infection and drug treatment; Fig. 2g-j
自噬机制验证
细胞类型、自噬/蛋白酶体抑制剂浓度和处理时间、tau泛素化检测方法
阅读提示:Methods: Cell culture, transfection, infection and drug treatment; Fig. 3
TYK2对tau聚集的影响
细胞模型(tau-YFP或FRET生物传感器)、tau种子来源和浓度、TYK2/FYN表达、TYK2抑制剂浓度、检测方法
阅读提示:Methods: In vitro tau aggregation assay in a cellular model; Fig. 5
体内验证
小鼠品系、AAV8注射剂量、注射时间点、观察时间点、tau病理检测方法(如PHF1)
阅读提示:Methods: ICV injection of AAV at postnatal day 0; Fig. 7 and 8
人类样本分析
AD和对照样本来源、脑区、样本量、TYK2和PHF1检测方法
阅读提示:Methods: Human tissue sample preparation and IB analysis; Fig. 4