谷氨酰胺再激活mTORC1的时程分析
验证谷氨酰胺是否能在氨基酸饥饿期间恢复mTORC1信号
在无氨基酸的EBSS中培养MEF和HepG2细胞,补充4 mM谷氨酰胺,免疫印迹检测p-4EBP1、p-ULK1、p-p70S6K;并用Torin 1或雷帕霉素确认mTORC1依赖性。
Glutamine metabolism regulates autophagy-dependent mTORC1 reactivation during amino acid starvation.
使用MEF、HepG2、C2C12多细胞模型,结合基因敲除、药物抑制、代谢组学和免疫荧光等多层验证。
野生型及Atg5敲除小鼠胚胎成纤维细胞(MEF) 人肝癌HepG2细胞 小鼠C2C12肌管
谷氨酰胺补充浓度4 mM及氨基酸饥饿持续时间(0-8小时) 自噬抑制:Atg5−/− MEFs或SAR405 (5 µM)、Baf (200 nM)、ConA (100 nM) 谷氨酰胺分解抑制:BPTES (10 µM) 转氨基作用抑制:AOA (5 mM)或GOT2/GPT2 siRNA敲低 mTORC1抑制:Torin 1 (250 nM)或雷帕霉素 (50 nM)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证谷氨酰胺是否能在氨基酸饥饿期间恢复mTORC1信号
在无氨基酸的EBSS中培养MEF和HepG2细胞,补充4 mM谷氨酰胺,免疫印迹检测p-4EBP1、p-ULK1、p-p70S6K;并用Torin 1或雷帕霉素确认mTORC1依赖性。
评估谷氨酰胺是否恢复mTORC1的溶酶体定位
MEFs在氨基酸饥饿±4 mM谷氨酰胺条件下培养1或5小时,固定后共染mTOR和Lamp2a,共聚焦显微镜观察共定位。
验证自噬是否介导谷氨酰胺的恢复效应
使用Atg5−/− MEFs或自噬抑制剂(SAR405、Baf、ConA)处理MEF、HepG2和C2C12肌管,在氨基酸饥饿+谷氨酰胺条件下检测mTORC1信号。
确定谷氨酰胺转化为谷氨酸及转氨基作用是否必要
在氨基酸饥饿+谷氨酰胺条件下,使用BPTES抑制谷氨酰胺酶,使用AOA抑制转氨基作用,或用siRNA敲低GOT2和GPT2,检测mTORC1信号;并补充谷氨酸、丙氨酸或NEAA混合物。
评估谷氨酰胺对NEAA、EAA和TCA循环中间产物水平的影响
MEFs在氨基酸饥饿±4 mM谷氨酰胺条件下培养不同时间,细胞裂解物经GC-TOF-MS检测代谢物。
验证谷氨酰胺和自噬是否恢复mTORC1对胰岛素的敏感性
HepG2和C2C12肌管在氨基酸饥饿±谷氨酰胺±自噬抑制剂条件下培养5小时,再用胰岛素刺激30分钟,检测mTORC1信号和p-Akt。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫印迹 | 磷酸化ULK1 (Ser757)抗体 | Cell Signaling Technology | 6888 |
| ULK1抗体 | Cell Signaling Technology | 8054 | |
| 磷酸化4EBP1 (Thr37/46)抗体 | Cell Signaling Technology | 2855 | |
| 4EBP1抗体 | Cell Signaling Technology | 9644 | |
| 磷酸化p70S6K (Thr389)抗体 | Cell Signaling Technology | 9234 | |
| p70S6K抗体 | Cell Signaling Technology | 2708 | |
| 磷酸化Akt (Thr308)抗体 | Cell Signaling Technology | 9275 | |
| Akt抗体 | Cell Signaling Technology | 4691 | |
| LC3A抗体 | Cell Signaling Technology | 4599 | |
| LC3B抗体 | Cell Signaling Technology | 3868 | |
| 免疫荧光 | mTOR抗体 | Cell Signaling Technology | 2983 |
| 免疫印迹 | β-微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 2128 |
| 免疫荧光 | Alexa 488抗兔二抗 | Cell Signaling Technology | 4412 |
| 抗LAMP2抗体 | Abcam | ab13524 | |
| Alexa 555抗大鼠二抗 | Thermo Fisher Scientific | A21434 | |
| 免疫印迹 | GOT2抗体 | ProteinTech | 14800-1-AP |
| GPT2抗体 | Santa Cruz | sc-398383 | |
| 药物处理 | 雷帕霉素 | Cayman Chemical | -- |
| 巴弗洛霉素A1 | Cayman Chemical | -- | |
| 刀豆霉素A | Cayman Chemical | -- | |
| MG132 | Cayman Chemical | -- | |
| Torin 1 | Tocris Bioscience | -- | |
| SAR405 | ApexBio Technology | -- | |
| BPTES | Sigma-Aldrich | -- | |
| 氨基氧乙酸半盐酸盐 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 二甲基-α-酮戊二酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 苹果酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 草酰乙酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Sigma-Aldrich | D7777 |
| MEM氨基酸溶液 | Life Technologies | -- | |
| MEM维生素溶液 | Life Technologies | -- | |
| Halt蛋白酶抑制剂混合物 | Life Technologies | -- | |
| 免疫印迹 | PVDF膜 | Bio-Rad Laboratories | -- |
| HRP标记二抗(兔#7074和小鼠#7076) | Cell Signaling Technology | 7074; 7076 | |
| 免疫荧光 | 含DAPI的抗荧光淬灭封片剂 | Vector Laboratories | -- |
| 代谢物检测 | 氨检测试剂盒 | Biovision | K370-100 |
| 乳酸检测试剂盒 | Biovision | K607-100 | |
| siRNA转染 | Got2 DsiRNA | IDT | mm.Ri.Got2.13.3 |
| Gpt2 DsiRNA | IDT | mm.Ri.Gpt2.13.3 | |
| 对照DsiRNA | IDT | 51-01-14-04 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 氨基酸饥饿处理 | 饥饿培养基为无氨基酸EBSS,补充25 mM葡萄糖、1X MEM维生素、0.2% BSA等,pH 7.4;谷氨酰胺4 mM;饥饿前预孵育30分钟。 阅读提示:Methods: Amino acid starvation and siRNA treatment |
| 自噬抑制 | Atg5−/− MEFs或抑制剂SAR405 (5 µM)、Baf (200 nM)、ConA (100 nM)的浓度及处理时间。 阅读提示:Methods: Materials; Figure legends 2b–d |
| 谷氨酰胺代谢抑制 | BPTES (10 µM)抑制谷氨酰胺酶;AOA (5 mM)抑制转氨基作用;GOT2/GPT2 siRNA各100 pmol,转染48小时。 阅读提示:Methods: Materials; Amino acid starvation and siRNA treatment; Figure legends 3b, 3e, 3f |
| mTORC1抑制 | Torin 1 (250 nM)或雷帕霉素 (50 nM)在饥饿诱导时加入。 阅读提示:Figure legends 1b, 1e |
| 胰岛素刺激 | 胰岛素50 nM刺激30分钟;饥饿5小时后进行。 阅读提示:Figure legend 5a, 5b |
| 代谢组学分析 | 样本量n=4-5;GC-TOF-MS检测;数据表示为未饥饿对照的倍数变化。 阅读提示:Methods: Analysis of metabolites; Figure legends 3a, 4a, 4b |