谷氨酰胺代谢在氨基酸饥饿期间调控自噬依赖性mTORC1再激活

Glutamine metabolism regulates autophagy-dependent mTORC1 reactivation during amino acid starvation.

作者信息Hayden Weng Siong Tan, Arthur Yi Loong Sim, Yun Chau Long
PMID28835610
发布时间2017-08-24
DOI10.1038/s41467-017-00369-y

实验完整度

高

使用MEF、HepG2、C2C12多细胞模型,结合基因敲除、药物抑制、代谢组学和免疫荧光等多层验证。

主要模型

野生型及Atg5敲除小鼠胚胎成纤维细胞(MEF) 人肝癌HepG2细胞 小鼠C2C12肌管

重点核对

谷氨酰胺补充浓度4 mM及氨基酸饥饿持续时间(0-8小时) 自噬抑制:Atg5−/− MEFs或SAR405 (5 µM)、Baf (200 nM)、ConA (100 nM) 谷氨酰胺分解抑制:BPTES (10 µM) 转氨基作用抑制:AOA (5 mM)或GOT2/GPT2 siRNA敲低 mTORC1抑制:Torin 1 (250 nM)或雷帕霉素 (50 nM)

摘要

自噬的激活和谷氨酰胺合成的增加是在饥饿期间维持氨基酸平衡的关键适应。在本研究中,我们探究了自噬和谷氨酰胺在调控mTORC1(一种调节细胞生长和增殖的关键激酶)中的作用。我们报道,在长时间氨基酸饥饿期间,单独补充谷氨酰胺足以恢复mTORC1活性。抑制自噬会废除谷氨酰胺的恢复作用,提示mTORC1的再激活是自噬依赖性的。抑制谷氨酰胺分解或转氨基作用会损害谷氨酰胺介导的mTORC1再激活,提示谷氨酰胺通过其转化为谷氨酸并恢复非必需氨基酸池来特异性再激活mTORC1。尽管在氨基酸饥饿期间必需氨基酸池持续下降,谷氨酰胺与自噬之间的交叉对话足以恢复mTORC1的胰岛素敏感性。因此,谷氨酰胺代谢和自噬构成一个特定的代谢程序,在氨基酸饥饿期间恢复mTORC1活性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在氨基酸饥饿期间,谷氨酰胺和自噬如何协同调控mTORC1的再激活?
核心机制
谷氨酰胺通过谷氨酰胺酶转化为谷氨酸,再经转氨基作用恢复非必需氨基酸池,从而以自噬依赖的方式再激活mTORC1。
主要证据
在MEF、HepG2和C2C12肌管中,谷氨酰胺补充恢复mTORC1信号及溶酶体定位;自噬或谷氨酰胺分解/转氨基抑制废除该效应;代谢组学显示非必需氨基酸池恢复而必需氨基酸池未恢复。
研究意义
揭示了谷氨酰胺代谢与自噬交叉对话在饥饿适应中恢复mTORC1活性和胰岛素敏感性的新机制,为谷氨酰胺的促合成效应提供了除回补作用外的解释。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

谷氨酰胺再激活mTORC1的时程分析

验证谷氨酰胺是否能在氨基酸饥饿期间恢复mTORC1信号

在无氨基酸的EBSS中培养MEF和HepG2细胞,补充4 mM谷氨酰胺,免疫印迹检测p-4EBP1、p-ULK1、p-p70S6K;并用Torin 1或雷帕霉素确认mTORC1依赖性。

2

mTORC1溶酶体定位的免疫荧光分析

评估谷氨酰胺是否恢复mTORC1的溶酶体定位

MEFs在氨基酸饥饿±4 mM谷氨酰胺条件下培养1或5小时,固定后共染mTOR和Lamp2a,共聚焦显微镜观察共定位。

3

自噬对谷氨酰胺诱导mTORC1再激活的必要性

验证自噬是否介导谷氨酰胺的恢复效应

使用Atg5−/− MEFs或自噬抑制剂(SAR405、Baf、ConA)处理MEF、HepG2和C2C12肌管,在氨基酸饥饿+谷氨酰胺条件下检测mTORC1信号。

4

谷氨酰胺代谢途径的机制验证

确定谷氨酰胺转化为谷氨酸及转氨基作用是否必要

在氨基酸饥饿+谷氨酰胺条件下,使用BPTES抑制谷氨酰胺酶,使用AOA抑制转氨基作用,或用siRNA敲低GOT2和GPT2,检测mTORC1信号;并补充谷氨酸、丙氨酸或NEAA混合物。

5

代谢组学分析氨基酸和TCA中间产物

评估谷氨酰胺对NEAA、EAA和TCA循环中间产物水平的影响

MEFs在氨基酸饥饿±4 mM谷氨酰胺条件下培养不同时间,细胞裂解物经GC-TOF-MS检测代谢物。

6

胰岛素敏感性恢复实验

验证谷氨酰胺和自噬是否恢复mTORC1对胰岛素的敏感性

HepG2和C2C12肌管在氨基酸饥饿±谷氨酰胺±自噬抑制剂条件下培养5小时,再用胰岛素刺激30分钟,检测mTORC1信号和p-Akt。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证蛋白质表达与信号通路变化
细胞功能与表型分析
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
磷酸化ULK1 (Ser757)抗体Cell Signaling Technology6888
ULK1抗体Cell Signaling Technology8054
磷酸化4EBP1 (Thr37/46)抗体Cell Signaling Technology2855
4EBP1抗体Cell Signaling Technology9644
磷酸化p70S6K (Thr389)抗体Cell Signaling Technology9234
p70S6K抗体Cell Signaling Technology2708
磷酸化Akt (Thr308)抗体Cell Signaling Technology9275
Akt抗体Cell Signaling Technology4691
LC3A抗体Cell Signaling Technology4599
LC3B抗体Cell Signaling Technology3868
mTOR抗体Cell Signaling Technology2983
β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology2128
Alexa 488抗兔二抗Cell Signaling Technology4412
抗LAMP2抗体Abcamab13524
Alexa 555抗大鼠二抗Thermo Fisher ScientificA21434
GOT2抗体ProteinTech14800-1-AP
GPT2抗体Santa Cruzsc-398383
雷帕霉素Cayman Chemical--
巴弗洛霉素A1Cayman Chemical--
刀豆霉素ACayman Chemical--
MG132Cayman Chemical--
Torin 1Tocris Bioscience--
SAR405ApexBio Technology--
BPTESSigma-Aldrich--
氨基氧乙酸半盐酸盐Sigma-Aldrich--
二甲基-α-酮戊二酸Sigma-Aldrich--
苹果酸Sigma-Aldrich--
草酰乙酸Sigma-Aldrich--
DMEM培养基Sigma-AldrichD7777
MEM氨基酸溶液Life Technologies--
MEM维生素溶液Life Technologies--
Halt蛋白酶抑制剂混合物Life Technologies--
PVDF膜Bio-Rad Laboratories--
HRP标记二抗(兔#7074和小鼠#7076)Cell Signaling Technology7074; 7076
含DAPI的抗荧光淬灭封片剂Vector Laboratories--
氨检测试剂盒BiovisionK370-100
乳酸检测试剂盒BiovisionK607-100
Got2 DsiRNAIDTmm.Ri.Got2.13.3
Gpt2 DsiRNAIDTmm.Ri.Gpt2.13.3
对照DsiRNAIDT51-01-14-04

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
氨基酸饥饿处理
饥饿培养基为无氨基酸EBSS,补充25 mM葡萄糖、1X MEM维生素、0.2% BSA等,pH 7.4;谷氨酰胺4 mM;饥饿前预孵育30分钟。
阅读提示:Methods: Amino acid starvation and siRNA treatment
自噬抑制
Atg5−/− MEFs或抑制剂SAR405 (5 µM)、Baf (200 nM)、ConA (100 nM)的浓度及处理时间。
阅读提示:Methods: Materials; Figure legends 2b–d
谷氨酰胺代谢抑制
BPTES (10 µM)抑制谷氨酰胺酶;AOA (5 mM)抑制转氨基作用;GOT2/GPT2 siRNA各100 pmol,转染48小时。
阅读提示:Methods: Materials; Amino acid starvation and siRNA treatment; Figure legends 3b, 3e, 3f
mTORC1抑制
Torin 1 (250 nM)或雷帕霉素 (50 nM)在饥饿诱导时加入。
阅读提示:Figure legends 1b, 1e
胰岛素刺激
胰岛素50 nM刺激30分钟;饥饿5小时后进行。
阅读提示:Figure legend 5a, 5b
代谢组学分析
样本量n=4-5;GC-TOF-MS检测;数据表示为未饥饿对照的倍数变化。
阅读提示:Methods: Analysis of metabolites; Figure legends 3a, 4a, 4b