验证CaBdf1 BD与乙酰化组蛋白肽的结合
确定CaBdf1 BD1和BD2是否识别多乙酰化组蛋白尾部。
纯化重组CaBdf1 BD1和BD2,使用组蛋白肽微阵列评估结合,并通过下拉实验验证H4ac4肽结合;YF突变体作为对照。
Selective BET bromodomain inhibition as an antifungal therapeutic strategy.
包含体外重组蛋白结合实验、白色念珠菌遗传突变体生长实验、小鼠感染模型毒力实验及晶体结构解析,具备功能与机制验证。
白色念珠菌(Candida albicans)菌株 小鼠血行播散性念珠菌病模型 重组CaBdf1 BD1/BD2蛋白
Bdf1 BD失活突变体(Y248F、Y425F或结构域缺失)对白色念珠菌生长的影响 小鼠感染模型中肾脏真菌负荷(CFU/g)的定量 小分子化合物对CaBdf1 BD与人Brd4 BD的IC50及Kd值 晶体结构中化合物与Bdf1 BD结合口袋的相互作用及空间位阻
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定CaBdf1 BD1和BD2是否识别多乙酰化组蛋白尾部。
纯化重组CaBdf1 BD1和BD2,使用组蛋白肽微阵列评估结合,并通过下拉实验验证H4ac4肽结合;YF突变体作为对照。
确定Bdf1及其BD功能是否为白色念珠菌体外生长所必需。
构建BDF1条件表达菌株(pTetO-BDF1)和BD失活突变体(BD1或BD2缺失或YF点突变),在固体和液体培养基中评估生长。
确定Bdf1 BD功能是否影响白色念珠菌在小鼠感染模型中的毒力。
使用Tet-OFF系统条件敲低Bdf1或BD失活突变体感染小鼠,7天后测定肾脏真菌负荷。
比较CaBdf1 BD与人Brd4 BD对BET抑制剂的敏感性,并解析CaBdf1 BD晶体结构。
使用HTRF和ITC测定JQ1、PFI-1、IBET-151、bromosporine对BD的抑制活性;解析未结合和结合抑制剂的CaBdf1 BD晶体结构。
发现靶向CaBdf1 BD1或BD2而不抑制人BET BD的小分子抑制剂。
对约80,000个化合物进行HTRF高通量筛选,通过剂量-反应曲线验证选择性,并测定化合物1和2的IC50、Kd及晶体结构。
确定小分子化合物3能否在白色念珠菌细胞内模拟BD1失活的生长抑制效果。
在BD1或BD2失活的菌株中测试化合物3的生长抑制活性,并测定细胞EC50。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白表达与纯化 | BL21(DE3)感受态细胞 | New England Biolabs | C2527I |
| 蛋白纯化 | 镍-次氮基三乙酸树脂 | Qiagen | -- |
| Superdex 75 10/300凝胶过滤柱 | GE Healthcare | -- | |
| 蛋白浓缩 | Centricon浓缩装置 | Millipore | -- |
| 下拉实验 | Dynabeads MyOne链霉亲和素C1磁珠 | Thermo Fisher | -- |
| 组蛋白肽微阵列 | 组蛋白肽微阵列 | Active Motif | 13005 |
| MODified微阵列标记试剂盒 | Active Motif | 13006 | |
| Western blot | 抗GST抗体 | GE Healthcare | -- |
| 抗GST抗体 | Dutscher | 27-4577-01 | |
| 组蛋白H4抗体 | Active Motif | 39269 | |
| ITC | NanoITC量热仪 | TA Instruments | -- |
| HTRF | 抗GST铽穴状化合物供体 | Cisbio Bioassays | 61GSTTLA |
| 链霉亲和素-d2受体 | Cisbio Bioassays | 610SADLA | |
| EPIgeneous结合域稀释液 | Cisbio Bioassays | 62DLBDDF | |
| 检测缓冲液 | Cisbio Bioassays | 62DB2FDG | |
| 384孔白色板 | Greiner | 781080 | |
| ClarioStar酶标仪 | BMG LABTECH | -- | |
| 高通量筛选 | Echo声波液体分配器 | -- | -- |
| 化合物 | JQ1 | Clinisciences | -- |
| PFI-1 | Sigma | -- | |
| IBET-151 | Sigma | -- | |
| bromosporine | Sigma | -- | |
| 化合物1 | ChemDiv | -- | |
| 细胞培养 | HeLa细胞 | ATCC | CCL-2 |
| IMR90细胞 | ATCC | CCL-186 | |
| 细胞毒性 | 细胞增殖试剂盒I(MTT) | Roche | -- |
| 细胞培养 | 96孔微板 | Falcon | 353072 |
| 菌株构建 | Gibson组装试剂盒 | New England Biolabs | -- |
| QuikChange定点突变试剂盒 | Agilent | -- | |
| 生长实验 | Multiskan FC微孔板光度计 | Thermo Fisher | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Bdf1 BD与组蛋白肽结合 | 重组CaBdf1 BD1/BD2的浓度(1 μM)、肽微阵列类型、YF突变对照 阅读提示:Methods: Pull-down and peptide array assays; Figure 1d,e |
| 白色念珠菌生长实验 | 起始细胞浓度(5,400 cells/ml)、培养基(SC)、温度(30°C)、多西环素(50 μg/ml)或甲硫氨酸/半胱氨酸(5 mM/0.25 mM)浓度 阅读提示:Methods: Growth assays; Figure 2c–e, Figure 8e,f |
| 小鼠感染实验 | 小鼠品系(BALB/c,雌性,8周龄)、接种量(2×10^5细胞)、感染途径(静脉)、每组n=6、终点(7天)、肾脏CFU测定 阅读提示:Methods: Mouse experiments; Figure 2f,g |
| HTRF和ITC结合实验 | 蛋白浓度(HTRF 5 nM)、肽浓度、化合物浓度范围、缓冲液组成、孵育时间和温度 阅读提示:Methods: HTRF assay; ITC; Supplementary Table 1 |
| 高通量筛选 | 化合物库来源(ChemDiv, LifeChem)、筛选浓度(20 μM或8 μM)、DMSO终浓度(1%或0.4%) 阅读提示:Methods: High-throughput chemical screening; Figure 6a |
| 晶体结构解析 | 蛋白浓度、沉淀剂组成、冷冻保护剂、衍射数据收集和精修统计 阅读提示:Methods: Crystallization and crystal structure determination; Supplementary Table 2 |