果糖-1,6-二磷酸和醛缩酶介导AMPK的葡萄糖感知

Fructose-1,6-bisphosphate and aldolase mediate glucose sensing by AMPK.

作者信息Chen-Song Zhang, Simon A Hawley, Yue Zong, Mengqi Li, Zhichao Wang, Alexander Gray, Teng Ma, Jiwen Cui, Jin-Wei Feng, Mingjiang Zhu, Yu-Qing Wu, Terytty Yang Li, Zhiyun Ye, Shu-Yong Lin, Huiyong Yin, Hai-Long Piao, D Grahame Hardie, Sheng-Cai Lin
PMID28723898
期刊Nature
发布时间2017-08-03
DOI10.1038/nature23275

实验完整度

高

使用MEFs、HEK293T、HEK293细胞及小鼠肝脏等多模型,结合敲除/敲低、突变体、无细胞重建、代谢物检测和体内腺病毒表达进行功能与机制验证

主要模型

小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) HEK293T细胞 HEK293细胞 C57BL/6J小鼠肝脏

重点核对

MEFs在无血清条件下切换至不同葡萄糖浓度(25、5、3、0 mM)处理4小时,检测AMPK活性和AMP:ATP/ADP:ATP比率 HEK293细胞稳定表达FLAG-tagged WT AMPKγ2或R531G突变体,在去除葡萄糖和/或谷氨酰胺后20分钟至2小时检测AMPK活性 AXIN-/-, LAMTOR1-/-, LKB1-/-, CaMKK2-/- MEFs中敲低醛缩酶或进行葡萄糖饥饿,检测AMPK磷酸化 无细胞重建实验:将未饥饿MEFs的胞质与葡萄糖饥饿MEFs的轻细胞器混合,加入200 μM各种糖酵解中间物,检测LAMTOR1免疫沉淀中AXIN/LKB1的结合 SLO透化MEFs中给予10 μM FBP,检测葡萄糖饥饿下AMPK磷酸化

摘要

大多数细胞的主要能源是葡萄糖,通过糖酵解和/或氧化代谢生成ATP。葡萄糖剥夺激活AMP活化蛋白激酶(AMPK),但这是否仅通过AMP或ADP——AMPK的经典激活剂——的变化发生尚不清楚。在这里,我们揭示了一种通过感知果糖-1,6-二磷酸(FBP)缺失而触发AMPK激活的AMP/ADP非依赖机制,随着细胞外葡萄糖和细胞内FBP降低,AMPK进行性激活。当未被FBP占据时,醛缩酶促进包含v-ATPase、Ragulator、AXIN、LKB1和AMPK的溶酶体复合物形成,这些先前已被证明是AMPK激活所必需的。敲低醛缩酶即使在葡萄糖充足的细胞中也激活AMPK,而催化缺陷型D34S醛缩酶突变体仍结合FBP,却阻断AMPK激活。无细胞重建实验表明,添加FBP破坏AXIN/LKB1与v-ATPase/Ragulator的结合。重要的是,在某些细胞类型中,急性葡萄糖饥饿期间AMP:ATP/ADP:ATP比率保持不变,且AMPK上完整的AMP结合位点不是AMPK激活所必需的。这些结果确立了醛缩酶以及一种糖酵解酶是调节AMPK的葡萄糖可用性传感器。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
葡萄糖剥夺激活AMPK是否完全依赖于AMP/ADP水平变化,以及是否存在AMP/ADP非依赖的葡萄糖感知机制。
核心机制
葡萄糖缺乏导致细胞内FBP水平下降,未结合FBP的醛缩酶促进v-ATPase-Ragulator-AXIN-LKB1-AMPK溶酶体复合物形成,从而激活AMPK;FBP结合醛缩酶则破坏该复合物。
主要证据
在MEFs、HEK293T和HEK293细胞中,葡萄糖剥夺激活AMPK而不增加AMP:ATP/ADP:ATP比率;敲低醛缩酶在髙糖下激活AMPK;D34S突变体阻断激活;无细胞重建显示FBP特异性解离AXIN/LKB1与LAMTOR1;小鼠肝脏饥饿后FBP下降且AMPK激活。
研究意义
确立了FBP作为葡萄糖可用性的关键信号代谢物,醛缩酶作为传感器将葡萄糖短缺信号传递给AMPK,揭示AMPK在葡萄糖感知中的 ancestral 作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

葡萄糖剥夺激活AMPK且不依赖AMP/ADP

验证葡萄糖剥夺是否通过AMP/ADP非依赖机制激活AMPK。

MEFs和HEK293T细胞在无血清条件下切换至降低的葡萄糖浓度,检测AMPK活性和AMP:ATP/ADP:ATP比率;使用表达WT或R531G AMPKγ2的HEK293细胞;小鼠饥饿16小时后检测肝脏AMPK磷酸化和腺苷酸比率。

2

溶酶体通路参与葡萄糖饥饿诱导的AMPK激活

验证AXIN、LAMTOR1、LKB1以及AMPKβ2 N-肉豆蔻酰化在葡萄糖饥饿激活AMPK中的作用。

使用AXIN-/-, LAMTOR1-/-, LKB1-/-, CaMKK2-/- MEFs,以及AMPKβ2敲除HEK293细胞重新表达WT、G2A或S108A突变体,检测AMPK活性和溶酶体转位。

3

FBP缺失是AMPK激活的信号

确定哪种糖酵解中间物负责抑制AMPK激活。

使用无细胞重建实验,将未饥饿MEFs胞质与葡萄糖饥饿MEFs轻细胞器混合,加入各种糖酵解中间物;在SLO透化MEFs中给予FBP;敲低PFK1或TPI,过表达FBP1或PFKP,检测AMPK磷酸化。

4

醛缩酶是FBP传感器

验证醛缩酶是否介导FBP对AMPK的调节。

建立多西环素诱导的ALDOA-C表达系统,依次敲低三种内源醛缩酶(ALDO-TKD);在AXIN-/-, LAMTOR1-/-, LKB1-/-, CaMKK2-/- MEFs中敲低醛缩酶;使用ALDOA-D34S和K230A突变体;小鼠尾静脉注射表达D34S或WT ALDOA的腺病毒后饥饿。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
兔抗磷酸化AMPKα-T172抗体Cell Signaling Technology2535
兔抗AMPKα抗体Cell Signaling Technology2532
兔抗磷酸化ACC-Ser79抗体Cell Signaling Technology3661
兔抗ACC抗体Cell Signaling Technology3662
兔抗LKB1抗体Cell Signaling Technology3047
兔抗AXIN1抗体Cell Signaling Technology2074
兔抗HK1抗体Cell Signaling Technology2024
兔抗HK2抗体Cell Signaling Technology2867
兔抗PFKP抗体Cell Signaling Technology8164
兔抗PFKL抗体Cell Signaling Technology8175
兔抗G6PD抗体Cell Signaling Technology12263
兔抗PKM1/2抗体Cell Signaling Technology3190
兔抗ALDOA抗体Cell Signaling Technology8060
兔抗β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology2128
兔抗AMPKβ1抗体Cell Signaling Technology12063
兔抗AMPKβ2抗体Cell Signaling Technology4148
兔抗HIS抗体Cell Signaling Technology12698
HRP标记的小鼠抗兔IgG(构象特异性)Cell Signaling Technology5127
IR染料800偶联链霉亲和素RocklandS000-32
兔抗CaMKK2抗体Proteintech11549-1-AP
小鼠抗ALDOC抗体AbgentAM2215b
兔抗PKLR抗体Abcamab38240
大鼠抗LAMP2抗体Abcamab13524
小鼠抗LAMP1抗体Abcamab25630
小鼠抗醛缩酶抗体Abcamab54770
山羊抗TPI抗体Abcamab28760
小鼠抗PHGDH抗体SigmaAMAB90786
兔抗GAPDH抗体SigmaG9545
山羊抗AXIN抗体Santa Cruz Biotechnologysc-8567
小鼠抗HA抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7392
小鼠抗LKB1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-32245
HRP标记的山羊抗小鼠IgGJackson ImmunoResearch115-035-003
HRP标记的山羊抗兔IgGJackson ImmunoResearch111-035-003
葡萄糖SigmaG7021
3-磷酸甘油醛SigmaG5251
3-磷酸甘油酸SigmaP8877
2-磷酸甘油酸Sigma19710
N-乙酰葡糖胺SigmaA3286
辛基β-D-吡喃葡萄糖苷SigmaO8001
链球菌溶血素OSigmaS5265
6-磷酸葡萄糖Santa Cruz Biotechnologysc-210728
6-磷酸果糖Santa Cruz Biotechnologysc-202563
果糖-1,6-二磷酸Santa Cruz Biotechnologysc-214805
1,3-二磷酸甘油酸Triveni Interchem Pvt Ltd--
Glutamax™Gibco35050
多西环素SelleckchemS4163
蛋白酶抑制剂混合物Roche04693116001
[U-13C]葡萄糖Cambridge isotope laboratoriesCLM-1396-PK
[U-13C]果糖-1,6-二磷酸Cambridge isotope laboratoriesCLM-8962-0
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco11965
胎牛血清----
青霉素----
链霉素----
聚乙烯亚胺Polysciences, Inc.23966
Lipofectamine 2000Invitrogen11668-027
无葡萄糖DMEMGibco11966
Glutamax™Gibco35050-038
D-葡萄糖GibcoA2494001
氨基酸Gibco11130-077
内标1Human Metabolome TechnologiesH3304-1002
内标3Human Metabolome TechnologiesH3304-1104
5 kDa截留滤器MilliporeUFC3LCCNB-HMT
毛细管电泳-飞行时间质谱仪Agilent Technologies7100; 6224
TSQ Quantiva与Ultimate 3000液相色谱系统联用ThermoScientific--
多孔石墨碳柱Thermo-ScientificC-35003-031030
Alexa-Fluor 488标记的抗山羊二抗Molecular ProbesA11058
Alexa-Fluor 594标记的抗大鼠二抗Molecular ProbesA21209
Alexa-Fluor 594标记的抗小鼠二抗Molecular ProbesA11032
ProLong Diamond抗淬灭封片剂Molecular ProbesP36970
PrimeSTAR HS聚合酶Takara--
pSpCas9(BB)-2A-Puro (PX459)质粒Addgene48139
pSpCas9(BB)-2A-GFP (PX458)质粒Addgene48138
Fugene 6转染试剂----
嘌呤霉素----
SpectraMax M5酶标仪Molecular Device--
Zeiss LSM 780共聚焦显微镜Zeiss--
氩气激光器ZeissLGK 7812
氦氖激光器ZeissLGK 7512 PF

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
葡萄糖饥饿处理细胞
细胞类型(MEFs、HEK293T、HEK293)、饥饿培养基成分(无葡萄糖DMEM含10% FBS和1 mM丙酮酸钠)、处理时间(15分钟至4小时)、葡萄糖浓度(25、5、3、0 mM)
阅读提示:Methods 'Cell culture, transient transfection and lentivirus infection'及Figure 1图注
AMPK活性检测
免疫沉淀所用抗体(抗AMPKα1/α2混合、抗AMPKβ2、抗FLAG)、激酶assay底物(AMARA肽)、重复数(n=3或4)
阅读提示:Methods 'AMPK assays'及Figure 1-4图注
无细胞重建实验
轻细胞器来源(2小时葡萄糖饥饿的MEFs)、胞质来源(未饥饿MEFs)、糖酵解中间物浓度(200 μM筛选,10 μM FBP解离)、孵育条件(37°C,400 rpm,15分钟+25分钟)
阅读提示:Methods 'In vitro reconstitution for lysosomal binding assays'及Figure 3图注
醛缩酶敲低
多西环素浓度(100 ng/ml)、siRNA序列、敲低顺序、撤除多西环素后时间(12小时)
阅读提示:Methods 'Plasmids'及Extended Data Figure 6a
小鼠饥饿实验
小鼠品系(C57BL/6J)、周龄(6周)、性别(雄性)、饥饿时间(16小时)、腺病毒注射量(1.3×10^9 pfu)、注射后时间(5天)
阅读提示:Methods 'Mouse studies'及Extended Data Figure 8d
代谢物检测(CE-MS/LC-MS)
细胞数量(10-cm皿60-70%汇合度)或肝脏重量(100 mg)、内标(IS1、IS3)、[U-13C]FBP浓度(10 μg/mL)、LC-MS色谱柱和梯度条件
阅读提示:Methods 'CE-MS-based analysis of metabolites'和'ATP, ADP and AMP detection by LC-MS'