柠檬酸清除是经典三羧酸循环中乌头酸酶2的主要功能

Citrate clearance is a major function of aconitase 2 in the canonical TCA cycle.

作者信息Abigail Xie, Julia S Brunner, Sangita Chakraborty, Angela M Montero, Anna E Bridgeman, Katrina I Paras, Ruobing Cui, Maider Fagoaga-Eugui, Monika Komza, Paige K Arnold, Benjamin T Jackson, Santiago Noriega Madrazo, Mohamed I Atmane, Sebastian E Carrasco, Lydia W S Finley
PMID41763199
期刊Cell
发布时间2026-04-30
DOI10.1016/j.cell.2026.01.028

实验完整度

高

包含NSCLC细胞系、MEFs、ESCs体外模型,以及条件性Aco2敲除小鼠体内模型,并进行功能与机制验证。

主要模型

NSCLC细胞系(A549、Calu1等) 小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) 小鼠胚胎干细胞(ESCs) Aco2fl/fl UBC-Cre-ERT2小鼠

重点核对

ACO2缺失细胞在5 mM丙酮酸处理下的增殖和竞争实验 ACO2缺失细胞中柠檬酸水平及CS共缺失的逆转效应 ACO2缺失细胞中p-eIF2α、ATF4及翻译抑制的检测 Aco2fl/fl小鼠肾脏柠檬酸积累和肾小管变性病理评分 3%柠檬酸饮水对ACO2缺陷小鼠生存期的影响

摘要

三羧酸(TCA)循环将营养物氧化与产生驱动氧化磷酸化的还原当量偶联。然而,对TCA循环组分的需求具有环境特异性,这提出了哪些TCA循环输出支持细胞适应性的问题。在这里,我们证明柠檬酸清除是TCA循环的一项基本功能。随着柠檬酸产生增加,TCA循环活性和对乌头酸酶2(ACO2)的依赖性也随之增加,ACO2是在TCA循环中启动柠檬酸分解代谢的酶。破坏柠檬酸分解代谢会激活整合应激反应并损害细胞适应性,而这些效应可通过阻止柠檬酸产生或促进线粒体柠檬酸外排来逆转。在体内,ACO2缺陷会诱导柠檬酸积累并引发肾脏肾小管变性,肾脏是生理上摄取循环柠檬酸的组织。因此,细胞内柠檬酸积累可能是一种代谢负担,而柠檬酸清除是TCA循环中ACO2的主要功能。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
经典TCA循环中柠檬酸氧化的决定因素是什么,以及经典TCA循环的哪些输出支持细胞适应性。
核心机制
丙酮酸氧化增加线粒体柠檬酸产生,ACO2启动柠檬酸分解代谢;柠檬酸产生超过清除时,线粒体柠檬酸积累激活整合应激反应,抑制翻译并损害细胞适应性。
主要证据
在多种NSCLC细胞系中,丙酮酸补充使ACO2缺失细胞柠檬酸积累并出现生长缺陷,CS共缺失逆转;ACO2缺失细胞中p-eIF2α升高、ATF4诱导、整体翻译下降;Aco2fl/fl小鼠肾脏柠檬酸积累、肾小管变性和ISR基因激活,柠檬酸饮水加剧损伤并缩短生存期。
研究意义
揭示代谢物清除是TCA循环的附加基本功能,细胞内柠檬酸积累可成为代谢负担,为理解TCA循环组分突变相关疾病和利用代谢弱点干预癌症提供依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

确定线粒体呼吸对经典TCA循环通路的驱动作用

探究线粒体呼吸与柠檬酸在经典TCA循环中保留程度的关系。

在NSCLC细胞系中进行[U-13C]葡萄糖示踪,计算mal+2/cit+2比值;用phenformin抑制复合体I、FCCP增加电子流、表达mitoLbNOX再生NAD+,检测比值变化。

2

验证丙酮酸氧化对TCA循环碳保留的决定作用

确定PDH活性是否决定柠檬酸在经典TCA循环中的下游保留。

使用PDK1 sgRNA编辑、二氯乙酸抑制PDK、UK5099抑制MPC,检测[U-13C]葡萄糖来源的citrate m+2和mal+2/cit+2比值,以及PDH磷酸化。

3

测试ACO2缺失对细胞适应性的影响

验证柠檬酸清除是否支持细胞适应性。

在A549和Calu1细胞中敲除ACO2,补充丙酮酸,检测柠檬酸水平、增殖、竞争实验,并共敲除CS或过表达SLC25A1进行 rescue。

4

探究柠檬酸积累对整合应激反应和翻译的影响

确定ACO2缺失后柠檬酸积累是否激活ISR并抑制翻译。

对ACO2缺失细胞进行RNA测序、p-eIF2α免疫印迹、L-HPG和OPP掺入实验、EdU掺入和细胞周期分析。

5

在体内验证ACO2缺失导致柠檬酸积累和肾脏损伤

确定ACO2在体内是否限制柠檬酸积累并影响肾脏功能。

使用Aco2fl/fl UBC-Cre-ERT2小鼠,他莫昔芬诱导ACO2敲除,检测血清和组织柠檬酸、肾脏病理、NGAL免疫组化、p-eIF2α和ATF4靶基因。

6

验证柠檬酸摄取对ACO2依赖性的影响

确定细胞自主柠檬酸摄取是否足以增加对ACO2的依赖。

在NSCLC细胞中表达SLC13A2,在HepG2细胞中利用内源SLC13A5,补充柠檬酸或丙酮酸,检测细胞活力、增殖和ISR标志物。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco11965092
Neurobasal-A培养基GibcoA2477501
胎牛血清Gemini--
去脂胎牛血清Gemini900–123
苯乙双胍SigmaP7045
FCCPSigmaC2920
UK-5099Tocris4186
L-丙氨酸SigmaA7469
柠檬酸三钠二水合物SigmaW302600
他莫昔芬SigmaT5648
葵花籽油SigmaS5007
氯化钠SigmaS9888
抗PDK1抗体Invitrogen32702
抗PDH抗体Cell Signaling Technology3205
抗磷酸化PDH-E1α (pSer293)抗体SigmaAP1062
抗磷酸化PDH-E1α (pSer232)抗体SigmaAP1063
抗磷酸化PDH-E1α (pSer300)抗体SigmaAP1064
抗vinculin抗体SigmaV9131
抗ACO2抗体Cell Signaling Technology6571S
抗CS抗体ProteinTech16131–1-AP
抗ACL抗体ProteinTech15421–1-ap
抗ACO1抗体ProteinTech12406–1-AP
抗ATF4抗体Cell Signaling Technology11815s
抗磷酸化eIF2α (Ser51)抗体Cell Signaling Technology3597
抗eIF2α抗体Cell Signaling Technology9721S
抗SLC13A2抗体ProteinTech21722–1-AP
抗SLC25A1抗体ProteinTech15235–1-AP
抗NGAL抗体InvitrogenPAS-79590
DAPIThermo FisherD1306
碘化丙啶BD Biosciences556463
MitoTracker深红色染料Thermo FisherM22426
TMREThermo FisherT669
L-同型炔丙基甘氨酸InvitrogenC10186
O-炔丙基嘌呤霉素MedChemExpressHY-15680
EdUVector LabsCCT-1149
Zombie NIR可固定活力检测试剂盒BioLegend423105
甲氧胺盐酸盐Sigma-Aldrich226904
Seahorse XF细胞线粒体压力测试试剂盒Agilent103015–100
TRIzol试剂Thermo Fisher Scientific15596018
Power SYBR Green预混液Thermo Fisher Scientific--
Fugene HD转染试剂Promega--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与处理
细胞系来源(ATCC或赠予)、培养基(DMEM+10% FBS或去脂FBS+4 mM L-谷氨酰胺)、丙酮酸和柠檬酸处理浓度(5 mM除非另作说明)及处理时间
阅读提示:STAR Methods中Cell lines小节
同位素示踪
[U-13C]葡萄糖浓度20 mM、[U-13C]谷氨酰胺浓度4 mM、标记时间4 h;抑制剂处理浓度(phenformin 0.625–10 μM、FCCP 1 μM、二氯乙酸10 mM、UK5099 10 μM)及处理时间24 h
阅读提示:STAR Methods中Isotope tracing and steady-state metabolite measurement小节
ACO2敲除与功能实验
sgRNA序列、ACO2编辑细胞系(A549、Calu1)、丙酮酸5 mM处理72 h或21天竞争实验、CS共编辑或SLC25A1过表达
阅读提示:STAR Methods中Generation of genetically edited lines小节及Figure 3图注
小鼠ACO2敲除
他莫昔芬50 mg/kg腹腔注射5天、Aco2fl/fl UBC-Cre-ERT2小鼠年龄6–7周、柠檬酸饮水3%预处理7天、取样时间10天或20–25天
阅读提示:STAR Methods中Mice小节及Figure 5、Figure 6图注
翻译抑制与ISR检测
L-HPG 50 μM标记1 h、OPP 20 μM标记15–60 min、放线菌酮10 μg/mL对照、EdU 10 μM标记30 min、p-eIF2α和ATF4蛋白检测
阅读提示:STAR Methods中L-HPG nascent protein synthesis assay、OP-puro assay、EdU incorporation flow cytometry assay小节及Figure 4图注