FOXP2依赖DNA结合维持溶解性
验证DNA结合是否防止FOXP2组装。
在HEK293细胞中稳定表达FOXP2野生型及DNA接触突变体(R553H、Y540D、R583D)的EGFP融合蛋白,通过荧光显微镜观察组装;同时进行荧光素酶报告基因检测DNA结合能力。
DNA binding and mitotic phosphorylation protect polyglutamine proteins from assembly formation.
使用HEK293细胞、酵母、hESC来源神经嵴细胞等多种模型,结合荧光成像、ChIP-seq、质谱和功能验证。
HEK293细胞系 H9 hESCs分化的神经嵴细胞 酿酒酵母BY4741 FOXP2及突变体过表达细胞
FOXP2野生型及突变体在HEK293细胞中的稳定表达水平 DNA结合缺陷突变(R553H、Y540D、R583D)对组装频率的影响 有丝分裂同步化使用1 μM诺考达唑处理18-24小时 磷酸化位点突变(11A、11D/E、泛磷酸化死亡)对溶解性的影响 HTT polyQ长度(30Q-91Q)与DNA结合域融合的组装频率
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证DNA结合是否防止FOXP2组装。
在HEK293细胞中稳定表达FOXP2野生型及DNA接触突变体(R553H、Y540D、R583D)的EGFP融合蛋白,通过荧光显微镜观察组装;同时进行荧光素酶报告基因检测DNA结合能力。
检验DNA结合本身是否足以增溶。
将FOXP2 R553H或Y540D与SSO7D DBD或人源DBD(SOX2、MAFK、FOXA1)融合,在HEK293和酵母中表达,观察定位;ChIP-seq分析染色质占据。
测试DBD融合是否能溶解致病性polyQ聚集体。
在HEK293细胞中稳定表达HTT exon1 91Q-EGFP或HTT-polyQ-EGFP-SSO7D,通过荧光显微镜和滤膜陷阱实验检测组装和SDS不溶性聚集体;并测试不同polyQ长度和SOX2 DBD亲和力突变。
探究有丝分裂期FOXP2和polyQ聚集体是否溶解。
使用诺考达唑诱导有丝分裂阻滞,对表达FOXP2突变体、HTT-polyQ-EGFP的细胞进行活细胞成像,追踪组装消散动力学。
鉴定有丝分裂磷酸化位点及其在溶解性中的作用。
通过质谱鉴定有丝分裂富集磷酸化位点;构建SP/TP位点磷酸化死亡(11A)和磷酸化模拟(11D/E)突变体,以及泛磷酸化死亡突变体,观察有丝分裂期溶解性和染色质结合。
测试EVO斑块磷酸化模拟或负电荷肽是否足以增溶FOXP2和HTT polyQ组装。
将EVO斑块磷酸化模拟或14个D/E残基融合到FOXP2截短体或HTT 91Q,观察细胞组装和SDS不溶性。
检验人类特异性氨基酸替换是否降低FOXP2组装倾向。
合成人类、黑猩猩和小鼠FOXP2(统一polyQ长度和密码子),在HEK293细胞中瞬时表达EGFP融合蛋白,量化组装频率与蛋白浓度的关系;并测试N303T和S325N单突变效应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Cytiva | SH30243.FS |
| 胎牛血清 | Sigma-Aldrich | F4135 | |
| MEM非必需氨基酸 | Stem Cell Technologies | 07600 | |
| Glutamax添加剂 | Gibco | 35050061 | |
| 抗生素-抗真菌剂 | Life Technologies | 15240062 | |
| 稳定细胞系构建 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | 11668019 |
| 超 piggyBac 转座酶 | System Biosciences | PB210PA-1 | |
| 有丝分裂阻滞 | 诺考达唑 | sigma | M1404 |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | SAFC | T9284 |
| 无IgG的牛血清白蛋白 | Jackson Immunoresearch | 001-000-162 | |
| Fluoromount G封片剂 | SouthernBiotech | 0100-01 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Research products International | R26200-250 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Scientific | 23227 | |
| ECL化学发光试剂 | Cytiva | RPN2236 | |
| 滤膜陷阱实验 | 醋酸纤维素膜 | Sterlitech Corporation | CA022005 |
| 硝酸纤维素膜 | GE Healthcare | 10600003 | |
| ChIP-seq | Dynabeads蛋白G磁珠 | Invitrogen | 10004D |
| ChIP DNA纯化浓缩试剂盒 | Zymo | D5205 | |
| NEBNext Ultra II DNA文库构建试剂盒 | NEB | E7645S | |
| 质谱 | Pierce抗HA磁珠 | Thermo Scientific | 88837 |
| 胰蛋白酶/LysC混合酶 | Promega | V5071 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞模型与培养 | HEK293细胞来源(ATCC CRL-1573)、培养基(DMEM高糖+10%FBS+添加剂) 阅读提示:STAR Methods中Cell culture小节 |
| 稳定表达细胞系构建 | 转染试剂比例(2.8 μl lipofectamine/μg DNA)、puromycin筛选浓度(2 μg/ml) 阅读提示:STAR Methods中Stable cell populations小节 |
| 有丝分裂同步化 | 诺考达唑浓度(1 μM)、处理时间(18-24小时) 阅读提示:STAR Methods中Mitotic cultures小节及图注 |
| 荧光素酶报告基因检测 | 转染后24小时检测、报告基因构建(6x FOXP2 motif驱动萤火虫荧光素酶) 阅读提示:STAR Methods中VPR-luciferase小节 |
| 组装频率量化 | 细胞总数计数方法(手动或CellProfiler)、成像条件(37°C, 5% CO2, Z-stack) 阅读提示:STAR Methods中Quantification of Data小节 |