临床样本中具核梭杆菌丰度与化疗后复发的关联分析
探究具核梭杆菌丰度是否与结直肠癌患者化疗后复发相关。
对复发和非复发患者的结直肠癌组织进行16S rDNA测序和qPCR定量具核梭杆菌,分析其与临床病理特征及无复发生存期的关系。
Fusobacterium nucleatum Promotes Chemoresistance to Colorectal Cancer by Modulating Autophagy.
包含患者队列(16S rDNA测序、qPCR)、细胞系体外实验、裸鼠移植瘤模型,并进行功能验证和机制验证。
结直肠癌患者组织样本(队列1-3) HCT116和HT29结直肠癌细胞系 BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型(HCT116、SW480细胞)
患者队列中具核梭杆菌丰量与复发及无复发生存期的关联(qPCR、Log-rank检验) 具核梭杆菌(MOI=100)共培养对奥沙利铂和5-FU诱导结直肠癌细胞凋亡的影响(流式细胞术) 自噬抑制剂氯喹(CQ)对具核梭杆菌诱导化疗耐药的逆转作用(体外和体内) miR-18a*和miR-4802对ULK1和ATG7的靶向调控及对化疗耐药的影响(荧光素酶报告基因、mimics/inhibitors) TLR4和MYD88敲低对具核梭杆菌诱导的自噬激活、miRNA丢失和化疗耐药的影响(siRNA/shRNA)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究具核梭杆菌丰度是否与结直肠癌患者化疗后复发相关。
对复发和非复发患者的结直肠癌组织进行16S rDNA测序和qPCR定量具核梭杆菌,分析其与临床病理特征及无复发生存期的关系。
验证具核梭杆菌是否激活结直肠癌细胞的自噬通路。
将具核梭杆菌与结直肠癌细胞共培养,通过RNA-seq、Western blot、实时PCR、自噬通量检测(mRFP-EGFP-LC3、透射电镜)评估自噬相关指标。
验证具核梭杆菌是否通过激活自噬使结直肠癌细胞对奥沙利铂和5-FU产生耐药。
在具核梭杆菌共培养条件下,用奥沙利铂和5-FU处理细胞,检测凋亡(流式细胞术、Western blot),并用CQ或ULK1/ATG7 siRNA干预。
探究具核梭杆菌上调ULK1和ATG7的分子机制。
通过miRNA表达谱分析、荧光素酶报告基因实验、mimics/inhibitors转染验证miR-18a*和miR-4802对ULK1和ATG7的靶向关系。
验证TLR4/MYD88信号通路是否参与具核梭杆菌诱导的自噬激活和化疗耐药。
用TLR4和MYD88 siRNA/shRNA敲低表达,检测对具核梭杆菌诱导的miRNA丢失、自噬激活和化疗耐药的影响。
在动物模型中验证具核梭杆菌促进化疗耐药及其分子机制。
建立裸鼠皮下移植瘤模型,给予具核梭杆菌、化疗药物、CQ、miRNA病毒或shRNA病毒处理,监测肿瘤生长和检测相关指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| Western blot | 抗ACTB-HRP抗体 | Sigma-Aldrich | A1978 |
| 抗LC3B抗体 | Sigma-Aldrich | L7543 | |
| 抗P62抗体 | Cell Signaling Technology | 8025 | |
| 抗Cleaved Caspase9抗体 | Cell Signaling Technology | 9505 | |
| 抗Cleaved Caspase3抗体 | Cell Signaling Technology | 9664 | |
| 抗Cleaved Caspase6抗体 | Cell Signaling Technology | 9761 | |
| 抗Cleaved Caspase7抗体 | Cell Signaling Technology | 8438 | |
| 抗Cleaved PARP抗体 | Cell Signaling Technology | 5625 | |
| 抗p-H2AX(Ser139)抗体 | Cell Signaling Technology | 9718 | |
| 抗p-AMPK(α)(Thr172)抗体 | Cell Signaling Technology | 2535 | |
| 抗Beclin1抗体 | Cell Signaling Technology | 3495 | |
| 抗ATG5抗体 | Cell Signaling Technology | 12994 | |
| 抗ATG12抗体 | Cell Signaling Technology | 4180 | |
| 抗ATG16L1抗体 | Cell Signaling Technology | 8089 | |
| 抗ATG3抗体 | Cell Signaling Technology | 3415 | |
| 抗MYD88抗体 | Cell Signaling Technology | 3699 | |
| 抗ULK1抗体 | Abcam | ab65056 | |
| 抗p-ULK1(Ser556)抗体 | Abcam | ab203207 | |
| 抗ATG7抗体 | Abcam | ab52472 | |
| 抗TLR4抗体 | Abcam | ab13556 | |
| 药物处理 | 奥沙利铂 | Selleck Chemicals | S1224 |
| 5-氟尿嘧啶 | Selleck Chemicals | S1209 | |
| 多柔比星 | Selleck Chemicals | S1208 | |
| 自噬抑制 | 氯喹 | Sigma-Aldrich | C6628 |
| 流式细胞术 | FITC Annexin V凋亡检测试剂盒I | BD Biosciences | 556547 |
| 可固定活性染料510 | BD Biosciences | 564406 | |
| DNA提取 | QIAamp DNA FFPE组织提取试剂盒 | QIAGEN | 56404 |
| RNA提取 | miRNease FFPE试剂盒 | QIAGEN | 217504 |
| TUNEL检测 | 原位细胞死亡检测试剂盒,POD | Roche | 11684817910 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者队列分析 | 队列来源、样本类型(新鲜冷冻或FFPE)、复发与非复发分组、F. nucleatum定量方法及截断值(-10.3 deltaCT) 阅读提示:Methods 'Patients and Clinical Specimens' 及 Figure 1 legend |
| 细胞共培养与自噬检测 | 细胞系(HCT116、HT29)、F. nucleatum MOI=100、共培养时间(文中未明确说明)、自噬通量检测方法(mRFP-EGFP-LC3、透射电镜) 阅读提示:Results 'F. nucleatum Promotes Cancer Autophagy Activation' 及 Figure 2 legend |
| 化疗耐药功能实验 | 化疗药物浓度(文中未明确说明)、CQ浓度、siRNA转染序列及效率、凋亡检测时间点 阅读提示:Results 'F. nucleatum Induces Cancer Chemoresistance via the Autophagy Pathway' 及 Figure 3 legend |
| miRNA靶向验证 | 荧光素酶报告基因质粒构建(野生型/突变型)、miRNA mimics/inhibitors浓度(20 nmol/L)、转染试剂及检测时间 阅读提示:Methods 'Luciferase Assay' 及 Figure 4 legend |
| 体内移植瘤实验 | 小鼠品系(BALB/c nude)、细胞接种数量(HCT116 5×10^6,SW480 1×10^7)、给药剂量(Oxaliplatin 5/7.5/10 mg/kg,5-FU 50 mg/kg,CQ 30 mg/kg)、给药途径和频率、每组n=8 阅读提示:Methods 'Mice' 及 Figure 5、6 legend |