hPSC-CM分化与长期培养
建立高纯度hPSC-CM长期培养成熟模型。
使用GiWi协议分化WTC11 hiPSCs,D16流式检测cTnT+纯度,随后长期培养至D113,每2-3天更换B27+培养基。
Multi-omic analysis reveals maturation programs in human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes during long-term culture
包含体外细胞模型的多组学时间序列分析和免疫细胞化学、qPCR验证,但缺乏独立功能验证和机制实验验证。
WTC11人诱导多能干细胞系 hPSC-CMs长期单层培养(D30、D60、D113)
流式细胞术检测D16 cTnT+心肌细胞纯度(平均76.2%) 免疫细胞化学检测MYH7/MYH6和MLC2V/MLC2A异构体转换(D42 vs D90) qPCR检测线粒体/核DNA含量比值(D30 vs D60) 转录组、蛋白质组和代谢组学多组学时间序列分析(D30、D60、D113,n=3-4)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立高纯度hPSC-CM长期培养成熟模型。
使用GiWi协议分化WTC11 hiPSCs,D16流式检测cTnT+纯度,随后长期培养至D113,每2-3天更换B27+培养基。
验证长期培养诱导的结构、肌节和代谢成熟表型。
免疫细胞化学检测ACTN2、MYH7/MYH6、MLC2V/MLC2A、Cx43和MF20;qPCR检测线粒体/核DNA比值;图像分析量化肌节长度、组织和Cx43斑点数。
获取D30、D60、D113的代谢组、蛋白质组和转录组数据。
平行孔收集RNA(Trizol法)和代谢物/蛋白质(甲醇淬灭法),进行质谱代谢组学、质谱蛋白质组学和RNA测序。
识别各时间点比较中显著变化的代谢物、蛋白质和转录本及其通路。
使用limma(代谢组和蛋白质组)和DESeq2(转录组)进行差异分析,定义log2FC>1且padj<0.05;使用MetaboAnalyst、ClusterProfiler等进行通路富集和GSEA分析。
推断时间依赖的转录因子活性并整合多组学数据识别协调调控程序。
使用DoRothEA/decoupleR进行TF活性推断;使用MOFA2进行多组学因子分析;使用MultiGSEA进行三组学通路富集;计算CM成熟评分。
评估长期培养hPSC-CMs的成熟程度相对于人心脏发育和其他成熟策略。
使用PACNet计算心脏相似性评分;与Cardoso-Moreira人心脏图谱、Shen电刺激数据集和Feyen代谢成熟培养基数据集比较。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | mTeSR1培养基 | STEMCELL Technologies | 85850 |
| 生长因子减少型Matrigel | Corning | 354230 | |
| Versene | Life Technologies | 15040066 | |
| 细胞传代 | Accutase | Innovative Cell Technology | AT104 |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | ThermoFisher | 11330032 |
| RPMI1640培养基 | Life Technologies | 11875119 | |
| 心肌分化 | 无胰岛素B27添加剂 | Life Technologies | A1895601 |
| CHIR99021 | Selleckchem | S1263 | |
| IWP2 | Tocris | 3533 | |
| 含胰岛素B27添加剂 | Life Technologies | 17504044 | |
| RNA提取 | Trizol试剂 | ThermoFisher | 15596018 |
| RNA纯化 | Direct-zol MiniPrep Plus柱 | Zymo | R2072 |
| RNA文库构建 | SMARTer链特异性总RNA文库构建试剂盒-哺乳动物 | Takara | -- |
| 测序 | Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 流式细胞术 | 小鼠IgG1抗cTnT抗体 | ThermoFisher | MA5-12960 |
| AF488标记抗小鼠IgG1抗体 | ThermoFisher | A-21121 | |
| BD Accuri C6 Plus流式细胞仪 | BD | -- | |
| 免疫细胞化学 | 兔IgG抗MYH7抗体 | R&D Systems | MAB90961100 |
| 小鼠IgG1抗MYH6抗体 | R&D Systems | MAB8979 | |
| 小鼠IgG2b抗MYL7抗体 | Synaptic Systems | 311011 | |
| 兔IgG抗MYL2抗体 | Proteintech | 10906-1-AP | |
| 小鼠IgG2b抗MF20抗体 | DSHB | -- | |
| 小鼠IgG1抗α-辅肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A7811 | |
| 兔IgG抗Cx43抗体 | Cell Signaling Technology | 3512 | |
| Hoechst 33342 | Invitrogen | H3570 | |
| 成像 | Nikon Ti2显微镜配Aura III光源 | Nikon/Lumencor | 80-10306 |
| Nikon A1R+共聚焦显微镜 | Nikon | -- | |
| 代谢组学 | Waters ACQUITY UPLC M-Class系统 | Waters Corporation | -- |
| Bruker solariX 12T FTICR质谱仪 | Bruker Daltonics | -- | |
| 蛋白质组学 | timsTOF Pro质谱仪 | Bruker Daltonics | -- |
| nanoElute超高效液相色谱系统 | Bruker Daltonics | -- | |
| IonOpticks C18色谱柱(25 cm×75 μm内径,1.7 μm颗粒) | IonOpticks | -- | |
| Trypsin Gold胰蛋白酶 | Promega | -- | |
| C18 ZipTip吸头 | -- | -- | |
| NanoDrop ND2000c分光光度计 | ThermoFisher | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| hPSC-CM分化 | CHIR99021浓度(6-12 μM)、IWP2浓度(5 μM)、分化时间线(D0、D2、D4、D6、D8、D10、D13) 阅读提示:Methods 4.2节 |
| 长期培养与多组学样本收集 | 收集时间点(D30、D60、D113)、每时间点重复数(n=3-4)、样本量(每孔约1-2百万细胞) 阅读提示:Methods 4.3节及Figure 1A |
| 免疫细胞化学 | 抗体稀释比例、成像放大倍数(20x/60x)、图像分析参数(SotaTool设置)、n=4-8图像每时间点 阅读提示:Methods 4.10节及Figure 1图注 |
| 代谢组学与蛋白质组学 | 质谱平台参数、数据预处理流程(缺失值填补、归一化)、差异分析阈值(log2FC>1,padj<0.05) 阅读提示:Methods 4.5、4.6节 |
| 转录组学 | RNA测序平台(Illumina NovaSeq 6000)、比对工具(STAR v2.5.3a)、差异分析(DESeq2) 阅读提示:Methods 4.7节 |