细胞分选与多组学数据生成
分离四种主要胶质细胞类型并获取其转录组、染色质可及性、DNA甲基化和3D染色质相互作用数据
利用细胞类型特异性标记和FACS从人中孕期皮层分离vRG、oRG、OPC和MG,进行RNA-seq、ATAC-seq、WGBS和H3K4me3 PLAC-seq
3D epigenome of glial cell types in developing human cortex
多供体原代细胞多组学整合、转基因小鼠增强子验证、shRNA敲低scRNA-seq、CRISPRi及荧光素酶报告基因功能验证
人中孕期原代皮层vRG和oRG 人原代皮层小胶质细胞(MG) 人原代皮层少突胶质前体细胞(OPC) 转基因小鼠胚胎增强子报告实验 人iPS细胞来源神经前体细胞(NPC)
vRG/oRG来自6名供体(GW15–18),MG/OPC来自9名供体(GW22–24) FACS分选标记:vRG为EOMES−HOPX低SOX2+,oRG为EOMES−HOPX高SOX2+,MG为PU.1+,OPC为OLIG2+ 每种细胞类型每种检测2–4个生物学重复 PLAC-seq使用H3K4me3抗体,2 kb分辨率鉴定染色质相互作用 转基因小鼠增强子报告实验在E12.5检测胚胎脑组织
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
分离四种主要胶质细胞类型并获取其转录组、染色质可及性、DNA甲基化和3D染色质相互作用数据
利用细胞类型特异性标记和FACS从人中孕期皮层分离vRG、oRG、OPC和MG,进行RNA-seq、ATAC-seq、WGBS和H3K4me3 PLAC-seq
定义细胞类型特异性cCREs并验证其体内增强子活性
整合ATAC-seq和WGBS定义低甲基化可及区域为cCREs;对候选元件进行转基因小鼠增强子报告实验;利用VISTA增强子数据库评估富集
鉴定区分vRG和oRG的差异可及区域、差异甲基化区域及关键转录因子
调用DARs和DMRs,整合DEGs;TOBIAS足迹分析预测TFBS差异;HOMER motif富集;构建TF靶基因网络
验证LHX2在oRG中的功能作用
在原代oRG中shRNA敲低LHX2,体外分化7天后进行scRNA-seq,分析转录组和细胞组成变化
利用机器学习优先排序GWAS风险变异并验证其调控功能
训练GKM-SVM模型预测染色质可及性,使用deltaSVM、ISM和GkmExplain评估变异影响;对rs4449074进行转基因小鼠验证
评估oRG cCREs中HARs富集并验证优先HAR变异的调控功能
比较cCREs与随机抽样cCREs的HAR重叠;利用GKM-SVM预测HAR变异影响;CRISPRi和荧光素酶报告基因验证HARsv2_1313和HARsv2_1602等功能
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| FACS | FcR封闭试剂 | Miltenyi Biotech | -- |
| PerCP-Cy5.5抗SOX2抗体 | BD Biosciences | 561506 | |
| PE-Cy7抗EOMES抗体 | Invitrogen | 25-4877-42 | |
| 未偶联抗HOPX抗体 | Proteintech | 11419-1-AP | |
| Alexa Fluor 647抗OLIG2抗体 | Abcam | ab225100 | |
| PE抗PU.1抗体 | Cell Signaling Technology | 81886 | |
| Alexa Fluor 647驴抗兔二抗 | Invitrogen | A-31573 | |
| RiboLock RNA酶抑制剂 | Thermo Scientific | EO0384 | |
| RNA-seq | RNA FFPE试剂盒 | Qiagen | 73504 |
| KAPA RNA HyperPrep with RiboErase试剂盒 | -- | HMR KK8560 | |
| ATAC-seq | Nextera DNA文库制备试剂盒 | Illumina | FC-121-1030 |
| Qiagen MinElute试剂盒 | Qiagen | 28004 | |
| AMPure磁珠 | Beckman Coulter | wsr-450437 | |
| WGBS | MagMAX FFPE DNA/RNA Ultra试剂盒 | Applied Biosciences | A31879 |
| EZ DNA甲基化直接试剂盒 | Zymo | D5020 | |
| Accel-NGS Methyl-seq组合双索引试剂盒 | Swift Biosciences | 38096 | |
| PLAC-seq | H3K4me3抗体 | Millipore | 04-745 |
| Arima-HiC+试剂盒 | Arima | -- | |
| oRG培养与感染 | 木瓜蛋白酶解离系统 | Worthington Biochemical | -- |
| oRG FACS | APC抗LIFR抗体 | R&D systems | FAB249A |
| PE-Cy7抗ITGA2抗体 | BioLegend | 359314 | |
| scRNA-seq | 10x GEM-X Universal 3' 4-plex芯片多重检测 | 10x Genomics | -- |
| CRISPRi | CROP-seq-opti骨架载体 | Addgene | 106280 |
| pMD2.G质粒 | Addgene | 12259 | |
| psPAX2质粒 | Addgene | 12260 | |
| 293T-LentiX细胞 | Takara Bio | 632180 | |
| PolyJet转染试剂 | SignaGen | SL100688 | |
| Amicon Ultra-15离心过滤器 | Millipore | UFC901024 | |
| iPS细胞培养 | mTeSR培养基 | STEMCELL Technologies | 100-0274 |
| Matrigel基质胶 | -- | -- | |
| DMEM/F12培养基 | Thermo Fisher | 10565018 | |
| NPC培养 | 神经干细胞培养基 | Thermo Fisher | A10509-01 |
| RT-qPCR | AllPrep DNA/RNA迷你试剂盒 | Qiagen | 80204 |
| iScript cDNA合成试剂盒 | Bio-Rad | 1708891 | |
| NEBNext Ultra II Q5预混液 | NEB | M0544 | |
| 免疫细胞化学 | 大鼠抗Ki67-Alexa Fluor 647抗体 | BioLegend | 151206 |
| 兔抗EMX2抗体 | GeneTex | GTX17164 | |
| 驴抗兔-Alexa Fluor 546抗体 | Invitrogen | A10040 | |
| 高内涵成像 | Opera Phenix Plus高内涵成像系统 | Revvity | -- |
| 荧光素酶实验 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1910 |
| pGL4.13载体 | Promega | E6681 | |
| Gibson组装试剂 | NEB | E2621L | |
| pRL-CMV-Renilla荧光素酶载体 | Promega | E2261 | |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | -- | L3000001 | |
| GloMax酶标仪 | Promega | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞分选 | 供体孕周:vRG/oRG为GW15–18,MG/OPC为GW22–24;分选标记组合:vRG(EOMES−HOPX低SOX2+)、oRG(EOMES−HOPX高SOX2+)、MG(PU.1+)、OPC(OLIG2+);各抗体稀释比例:HOPX 1:250,其余1:20 阅读提示:Methods 'FACS'小节及Supplementary Figs. 1–2分选策略图 |
| 多组学数据生成 | 每种细胞类型每种检测的重复数(2–4);ATAC-seq起始细胞数50,000–100,000;PLAC-seq起始细胞数2–4百万;WGBS起始细胞数2.9×10^5–1.5×10^6 阅读提示:Methods对应小节及Fig. 1c重复数表格 |
| 转基因小鼠增强子报告实验 | 小鼠品系FVB,胚胎收集时间E12.5;候选元件筛选标准(ATAC-seq信号>0.8 CPM且细胞类型差异>0.5 CPM) 阅读提示:Methods 'Mouse enhancer transgenic assay'小节及Supplementary Table 4 |
| LHX2敲低scRNA-seq | shRNA序列见Supplementary Table 7;体外分化7天;每条件4个生物学重复;起始细胞数50,000/孔 阅读提示:Methods 'Isolation and in vitro culture of oRG'和'scRNA-seq analysis of oRG'小节及Supplementary Table 7 |
| CRISPRi和荧光素酶验证 | gRNA序列见Supplementary Table 10;荧光素酶实验转染比例(HAR载体:pRL-CMV=10:1);3次独立实验 阅读提示:Methods 'CRISPRi knockdown of HARsv2_1313'和'Luciferase experiments'小节及Supplementary Tables 10–11 |