全基因组CRISPR筛选鉴定药物应答基因
鉴定介导致敏或耐药的基因组决定因素
将Brunello sgRNA文库转导MOLM-13 Cas9细胞,第8天用多种AML药物治疗,第20天评估sgRNA丰度变化
Modulation of RNA splicing enhances response to BCL2 inhibition in leukemia.
含全基因组及RBP聚焦CRISPR筛选、多种AML细胞系、Rbm10条件敲除小鼠、NSG移植瘤及PDX模型,并有功能与机制验证
人AML细胞系MOLM-13(MLL-AF9易位伴FLT3ITD) 多种人AML细胞系(THP-1、U937、KG-1等) NSG/NSGS小鼠移植瘤及PDX模型 Rbm10条件敲除(Mx1-cre Rbm10fl/y)小鼠
CRISPR筛选及验证中venetoclax处理浓度为25 nM(筛选)或50 nM(竞争实验) 体内venetoclax给药剂量100 mg/kg/天,口服灌胃,vehicle对照 SM09419体内给药25 mg/kg每日口服,PDX模型给药3周 RBM10敲除验证采用Western blot及NGS indel分析 Synergy以ZIP、Loewe、HSA模型计算,至少3个技术/生物学重复
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定介导致敏或耐药的基因组决定因素
将Brunello sgRNA文库转导MOLM-13 Cas9细胞,第8天用多种AML药物治疗,第20天评估sgRNA丰度变化
验证RNA剪接因子对venetoclax应答的影响
使用靶向492个RNA结合蛋白功能域的2,855条sgRNA文库进行筛选,并对RBM10等候选基因进行竞争实验验证
评估RBM10缺失对AML细胞对venetoclax敏感性的影响
在多种分子亚型AML细胞系中进行剂量反应曲线和竞争增殖实验,包括TP53突变细胞系
评估RBM10缺失对体内白血病负荷和生存的影响
将表达荧光素酶的MOLM-13细胞移植入NSG小鼠,发病后给予venetoclax或vehicle
评估Rbm10缺失对正常造血的影响
构建Rbm10 cKO小鼠,pIpC诱导后行集落形成实验和竞争性骨髓移植
阐明RBM10调控剪接及XIAP、BCL2A1的机制
进行RBM10 eCLIP和RNA-seq,分析差异剪接事件,并用cDNA回补和XIAP/BCL2A1过表达验证
评估CLK/DYRK抑制剂与venetoclax联合的协同作用及对耐药的克服
在AML细胞系、venetoclax耐药MOLM-13及PDX模型中进行药物联用和单药实验
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| Western blot | 抗RBM10兔多克隆抗体 | Bethyl Laboratories | A301-006A |
| β-肌动蛋白HRP抗体 | Sigma Aldrich | A3854 | |
| 抗磷酸化SR蛋白抗体克隆1H4 | Millipore Sigma | MABE50 | |
| 抗总SR蛋白抗体(1H4) | Santa Cruz | sc-13509 | |
| 抗XIAP抗体 | Cell Signaling | 2042S | |
| 抗U2AF2抗体 | Abcam | ab37530 | |
| 抗RBM5抗体 | Abcam | ab245646 | |
| 抗MCL-1抗体 | SantaCruz | sc-12756 | |
| 抗FLT3抗体 | Cell Signaling | 3462S | |
| 流式分析 | Fc受体封闭试剂 | BioLegends | 422302 |
| FITC抗人CD45抗体 | BioLegend | 368507 | |
| APC抗小鼠CD45抗体 | BioLegend | 103111 | |
| PE抗人CD34抗体 | BioLegend | 343605 | |
| APC/Cyanine7抗人CD38抗体 | BioLegend | 303533 | |
| 药物处理 | 维奈克拉 | Fisher | NC1235948 |
| SM09419 | BioSplice | -- | |
| 阿糖胞苷 | Sigma | BP383 | |
| 依托泊苷 | Sigma | E1383-25MG | |
| 盐酸伊达比星 | Sigma | I1656-10MG | |
| 米哚妥林 | SelleckChem | S8064 | |
| 5-氮杂胞苷 | SelleckChem | S1782 | |
| 细胞培养 | G418 | ThermoFisher Scientific | 10131027 |
| 杀稻瘟菌素 | Fisher | A1113903 | |
| 聚凝胺 | Sigma Aldrich | TR-1003-G | |
| 聚乙烯亚胺 | Polysciences, Inc | 23966 | |
| RNA提取 | RNeasy Plus微型试剂盒 | Qiagen | 74136 |
| 集落形成实验 | MethoCult GF M3434培养基 | StemCell Technologies | 03434 |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo发光细胞活力检测 | Promega | G7572 |
| gDNA提取 | NucleoSpin血液XL提取试剂盒 | Takara | 740950.1 |
| cDNA合成 | Verso cDNA合成试剂盒 | ThermoFisher Scientific | AB1453B |
| NanoBRET | Nano-Glo双荧光素酶报告基因检测 | Promega | N1610 |
| 激酶实验 | Z’-LYTE激酶实验 | ThermoFisher Scientific | PV3190 |
| PCR | Phusion Flash高保真PCR预混液 | Fisher | F548L |
| 文库构建 | KAPA Hyper文库构建试剂盒 | Roche | KK8500 |
| 体内成像 | D-荧光素钾盐 | Gold-Bio Technology | LUCK-500 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 全基因组CRISPR筛选 | 药物浓度(venetoclax 25 nM、cytarabine 50 nM等)、处理时间(转导后第8天)、测序时间点(第20天)、感染复数(约0.3) 阅读提示:STAR Methods中CRISPR Screen小节及Figure 1A图注 |
| RBM10体内实验 | 细胞接种量(100,000)、照射剂量(5.5 Gy)、venetoclax剂量(100 mg/kg/天)及给药途径(口服灌胃)、每组小鼠数 阅读提示:STAR Methods中Animal experiments小节及Figure 2图注 |
| Rbm10条件敲除与造血评估 | pIpC诱导方案、集落形成接种密度(20,000细胞/重复)、培养天数(7天)、移植细胞量(0.5百万)及照射剂量(2×450 cGy) 阅读提示:STAR Methods中Colony-forming assays与Bone marrow transplantation小节及Figure 2图注 |
| SM09419体内及PDX实验 | SM09419剂量(25 mg/kg每日口服)、给药时长(3周)、PDX接种细胞量(4百万,股骨内注射)、vehicle组成(5% polyvinylpyrrolidone) 阅读提示:STAR Methods中Patient-derived xenograft experiments小节及Figure 6C图注 |
| RNA-seq与eCLIP | 处理浓度与时间(SM09419 100 nM、venetoclax 10 nM、48小时)、每组重复数(n=3)、eCLIP重复数(4个) 阅读提示:Figure 5A图注及STAR Methods中eCLIP与RNA-seq小节 |