二肽重复蛋白抑制C9ORF72 ALS/FTD中的同源定向DNA双链断裂修复

Dipeptide repeat proteins inhibit homology-directed DNA double strand break repair in C9ORF72 ALS/FTD

作者信息Nadja S Andrade, Melina Ramic, Rustam Esanov, Wenjun Liu, Mathew J Rybin, Gabriel Gaidosh, Abbas Abdallah, Samuel Del'Olio, Tyler C Huff, Nancy T Chee, Sadhana Anatha, Tania F Gendron, Claes Wahlestedt, Yanbin Zhang, Michael Benatar, Christian Mueller, Zane Zeier
PMID32093728
发布时间2020-02-24
DOI10.1186/s13024-020-00365-9

实验完整度

研究包含体外细胞系修复报告实验、NPM1突变体定位与结合实验、iPSC神经元分化及CRISPR/Cas9基因编辑等基因对照、死后脑组织Western分析、STORM超分辨成像等多个独立层级,并进行功能与机制验证。

主要模型

U-2 OS细胞系 iPSC来源的运动神经元 C9ALS/FTD患者死后脑组织

重点核对

DPR类型(PR、GR、GA)及转染剂量(1μg质粒) NPM1敲低(siRNA)及NPM1突变体(WT、NESΔ、NLSΔ、AΔ) I-SceI报告细胞系及检测的修复途径(NHEJ、SSA、MMEJ、HR) iPSC神经元分化时间(至少4周)及C9ORF72状态(HRE+或等基因对照) 脑组织样本的脑区(运动皮层、枕叶皮层、小脑)及诊断组(C9ALS、sALS、对照)

摘要

背景:C9ORF72六核苷酸重复扩增是肌萎缩侧索硬化症(ALS)和额颞叶痴呆(FTD)最常见的已知遗传原因,这两种疾病都是致命的年龄相关性神经退行性疾病。C9ORF72扩增编码五种二肽重复蛋白(DPR),这些蛋白通过一种非经典翻译机制产生。在DPR中,脯氨酸-精氨酸(PR)、甘氨酸-精氨酸(GR)和甘氨酸-丙氨酸(GA)的神经毒性最强,并增加DNA双链断裂(DSB)的频率。虽然这些基因毒性损伤的积累日益被认为是疾病的一个特征,但DPR介导的DNA损伤的机制尚不清楚,且DPR对每种DNA DSB修复途径效率的影响此前尚未被评估。方法与结果:使用DNA DSB修复试验,我们评估了特定修复途径的效率,发现PR、GR和GA降低了非同源末端连接(NHEJ)、单链退火(SSA)和微同源介导的末端连接(MMEJ)的效率,但不影响同源重组(HR)。我们发现PR部分通过结合核仁蛋白核磷蛋白(NPM1)来抑制DNA DSB修复。NPM1的耗竭抑制了NHEJ和SSA,表明PR表达细胞中NPM1的功能丧失导致非同源和同源定向DNA DSB修复途径均受阻。通过删除NPM1的亚细胞定位信号,我们发现PR结合NPM1,无论NPM1被导向哪个细胞区室。删除已知与其他富含精氨酸蛋白结合的NPM1酸性环基序,消除了PR与NPM1的结合。使用共聚焦和超分辨免疫荧光显微镜,我们发现RAD52(SSA修复机制的组成部分)的水平在iPSC神经元中相对于通过CRISPR/Cas9基因组编辑删除了C9ORF72扩增的等基因对照显著增加。死后脑组织的Western分析证实,与对照组相比,C9ALS/FTD样本中RAD52免疫反应性显著增加。结论:总的来说,我们表征了DPR对关键DNA DSB修复途径的抑制作用,确定了NPM1是DNA修复的促进因子,而PR抑制该因子,并揭示了同源定向DNA DSB修复途径的缺陷是C9ORF72相关疾病的一个新特征。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
C9ORF72相关的二肽重复蛋白(DPR)对DNA双链断裂修复途径效率的影响,以及NPM1在其中所起到的作用。
核心机制
富含精氨酸的DPR(PR和GR)通过结合NPM1的酸性环,抑制其在DNA损伤修复中的功能,特别是通过阻碍NPM1从核仁到核质的转位,从而降低NHEJ和SSA修复效率,导致同源定向修复缺陷。
主要证据
基于I-SceI报告系统,PR、GR和GA降低NHEJ、SSA和MMEJ效率;NPM1敲低模拟PR的抑制效应;STORM显示DNA损伤后NPM1与pRAD52共定位;在C9ALS iPSC运动神经元及患者脑组织中,RAD52水平显著升高。
研究意义
将异常的同源定向DNA DSB修复确定为C9ORF72相关疾病的新机制,并提示NPM1和RAD52在RNA引导的DNA修复中发挥关键作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估DPR对DSB修复途径效率的影响

确定PR、GR、GA是否影响特定DNA双链断裂修复途径的效率。

使用I-SceI荧光报告系统,在U-2 OS细胞中分别过表达PR、GR、GA或对照载体,通过FACS检测GFP阳性细胞比例来评估NHEJ、MMEJ、SSA和HR的效率。

2

确定PR与NPM1的结合及亚细胞定位

验证PR是否与NPM1直接结合,以及这种结合是否不依赖于核仁微环境。

使用稳定表达野生型或NPM1亚细胞定位信号缺失突变体的U-2 OS细胞,共表达PR,通过共聚焦显微镜、自动图像分析、dot blot等检测PR与NPM1的共定位。

3

验证NPM1酸性环突变体对PR结合的影响

确认NPM1的酸性环结构域是否为PR与NPM1结合所必需。

生成NPM1酸性环缺失突变体(AΔ)与定位信号缺失的联合突变体,共表达PR,通过共聚焦显微镜和图像分析检测共定位的减少。

4

评估NPM1敲低对DSB修复效率的影响

确定NPM1功能丧失是否抑制NHEJ和SSA修复途径。

使用siRNA敲低NPM1,同时表达PR或对照载体,通过I-SceI报告系统检测NHEJ和SSA效率,并检测γH2AX水平。

5

检测DNA损伤后NPM1与pRAD52的共定位

验证NPM1是否在DNA双链断裂后转位至核质并参与SSA修复。

用依托泊苷处理U-2 OS细胞诱导DSB,通过STORM超分辨显微镜观察NPM1从核仁到核质的转位及与pRAD52的共定位。

6

检测C9ALS iPSC神经元中DNA损伤标志物表达

评估C9ORF72扩增的iPSC运动神经元中DNA损伤修复途径是否失调。

将C9ALS患者iPSC分化为运动神经元,用Western blot检测γH2AX、Ku70和pRAD52水平,并利用CRISPR/Cas9基因编辑生成等基因对照细胞系。

7

检测C9ALS/FTD患者脑组织中RAD52表达

验证C9ALS/FTD患者脑组织中SSA相关蛋白RAD52是否异常升高。

提取患者死后脑组织蛋白,通过Western blot检测总RAD52和pRAD52水平,并使用Meso Scale Discovery免疫分析检测poly(GP)水平以确认DPR表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Lipofectamine 2000 CDInvitrogen12,566,014
G418硫酸盐ThermoFisher10,131,035
抗PR重复抗体ProteinTech23,979–1-AP
Alexa Fluor-594二抗ThermoFisherR37117
DAPIThermoFisherR37605
Matrigel基质胶Corning354,277
mTeSR1培养基StemCell Technologies85,850
温和细胞解离试剂StemCell Technologies07174
聚甲基丙烯酸羟乙酯SigmaP3932
Neurobasal培养基Life technologies21,103–049
NeuroCult SM1添加剂StemCell Technologies05711
碱性成纤维细胞生长因子PeproTech100-18B
表皮生长因子PeproTechAF-100-15
肝素Sigma-AldrichH3149-25KU
DMEM/F12培养基ThermoFisher11,320,033
N2添加剂GibcoA13707–01
非必需氨基酸Gibco11,140–050
视黄酸Sigma-Aldrich302–79-4
环磷酸腺苷Sigma-Aldrich60–92–4
抗坏血酸Sigma-Aldrich50–81-7
胶质细胞源性神经营养因子PeproTech450–10
脑源性神经营养因子PeproTech450–02
腔室载玻片MatTekCCS-8
M-PER哺乳动物蛋白提取试剂ThermoFisher78,501
磷酸酶和蛋白酶抑制剂ThermoFisher1,862,495 and 78,438
BCA蛋白定量试剂盒Pierce23,227
Criterion SDS凝胶Bio-Rad5,671,034
硝酸纤维素膜Bio-Rad162–0232
增强化学发光底物ThermoFisher32,209
FastStart PCR预混液Sigma-Aldrich4,710,436,001
DNeasy血液和组织试剂盒Qiagen69,506
NE-PER核和细胞质提取试剂盒ThermoFisher78,833

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
DNA修复效率检测
DPR类型(PR、GR、GA)、I-SceI质粒剂量(1μg)、DPR质粒剂量(1μg)、转染试剂(Lipofectamine 2000 CD)、转染时间(48小时)、报告细胞系(U-2 OS)
阅读提示:Methods部分“Assessment of DNA repair efficiency”及图2图注
NPM1敲低与过表达
siRNA浓度(20μM NPM1或对照siRNA)、NPM1突变体(WT、NESΔ、NLSΔ、AΔ)、质粒来源(Addgene编号)、转染剂量(1μg PR质粒)
阅读提示:Methods部分“Expression of nucleophosmin-GFP fusion proteins”及“Quantification of nucleophosmin and PR sub-cellular localization”
iPSC培养与分化
iPSC系(C9ALS-1, C9ALS-2, C9ALS-4, C9ALS-5)、培养条件(mTeSR1、Matrigel)、分化方案(NeuroCult SM1、bFGF、EGF、肝素等)、分化时间(至少4周)
阅读提示:Methods部分“iPSC culturing and neuronal differentiation”
蛋白表达检测
组织来源(运动皮层、枕叶皮层、小脑)、诊断组(C9ALS、sALS、对照)、样本量(每组6例)、蛋白质上样量(30μg)
阅读提示:Methods部分“Protein isolation from post-mortem tissues and immunoblotting”及图6图注
基因编辑
AAV载体(pAAV-CB-GFP-C9gR-2-3和pAAV-CB-GFP-C9gR-2-4)、转导时间(2周)、克隆筛选(PCR检测编辑)
阅读提示:Methods部分“CRISPR/Cas9 Adeno-associated viral vectors”及“Detection of genome editing”