评估DPR对DSB修复途径效率的影响
确定PR、GR、GA是否影响特定DNA双链断裂修复途径的效率。
使用I-SceI荧光报告系统,在U-2 OS细胞中分别过表达PR、GR、GA或对照载体,通过FACS检测GFP阳性细胞比例来评估NHEJ、MMEJ、SSA和HR的效率。
Dipeptide repeat proteins inhibit homology-directed DNA double strand break repair in C9ORF72 ALS/FTD
研究包含体外细胞系修复报告实验、NPM1突变体定位与结合实验、iPSC神经元分化及CRISPR/Cas9基因编辑等基因对照、死后脑组织Western分析、STORM超分辨成像等多个独立层级,并进行功能与机制验证。
U-2 OS细胞系 iPSC来源的运动神经元 C9ALS/FTD患者死后脑组织
DPR类型(PR、GR、GA)及转染剂量(1μg质粒) NPM1敲低(siRNA)及NPM1突变体(WT、NESΔ、NLSΔ、AΔ) I-SceI报告细胞系及检测的修复途径(NHEJ、SSA、MMEJ、HR) iPSC神经元分化时间(至少4周)及C9ORF72状态(HRE+或等基因对照) 脑组织样本的脑区(运动皮层、枕叶皮层、小脑)及诊断组(C9ALS、sALS、对照)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定PR、GR、GA是否影响特定DNA双链断裂修复途径的效率。
使用I-SceI荧光报告系统,在U-2 OS细胞中分别过表达PR、GR、GA或对照载体,通过FACS检测GFP阳性细胞比例来评估NHEJ、MMEJ、SSA和HR的效率。
验证PR是否与NPM1直接结合,以及这种结合是否不依赖于核仁微环境。
使用稳定表达野生型或NPM1亚细胞定位信号缺失突变体的U-2 OS细胞,共表达PR,通过共聚焦显微镜、自动图像分析、dot blot等检测PR与NPM1的共定位。
确认NPM1的酸性环结构域是否为PR与NPM1结合所必需。
生成NPM1酸性环缺失突变体(AΔ)与定位信号缺失的联合突变体,共表达PR,通过共聚焦显微镜和图像分析检测共定位的减少。
确定NPM1功能丧失是否抑制NHEJ和SSA修复途径。
使用siRNA敲低NPM1,同时表达PR或对照载体,通过I-SceI报告系统检测NHEJ和SSA效率,并检测γH2AX水平。
验证NPM1是否在DNA双链断裂后转位至核质并参与SSA修复。
用依托泊苷处理U-2 OS细胞诱导DSB,通过STORM超分辨显微镜观察NPM1从核仁到核质的转位及与pRAD52的共定位。
评估C9ORF72扩增的iPSC运动神经元中DNA损伤修复途径是否失调。
将C9ALS患者iPSC分化为运动神经元,用Western blot检测γH2AX、Ku70和pRAD52水平,并利用CRISPR/Cas9基因编辑生成等基因对照细胞系。
验证C9ALS/FTD患者脑组织中SSA相关蛋白RAD52是否异常升高。
提取患者死后脑组织蛋白,通过Western blot检测总RAD52和pRAD52水平,并使用Meso Scale Discovery免疫分析检测poly(GP)水平以确认DPR表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与转染 | Lipofectamine 2000 CD | Invitrogen | 12,566,014 |
| 细胞培养与筛选 | G418硫酸盐 | ThermoFisher | 10,131,035 |
| 免疫荧光染色 | 抗PR重复抗体 | ProteinTech | 23,979–1-AP |
| Alexa Fluor-594二抗 | ThermoFisher | R37117 | |
| DAPI | ThermoFisher | R37605 | |
| iPSC培养 | Matrigel基质胶 | Corning | 354,277 |
| mTeSR1培养基 | StemCell Technologies | 85,850 | |
| 神经元分化 | 温和细胞解离试剂 | StemCell Technologies | 07174 |
| 聚甲基丙烯酸羟乙酯 | Sigma | P3932 | |
| Neurobasal培养基 | Life technologies | 21,103–049 | |
| NeuroCult SM1添加剂 | StemCell Technologies | 05711 | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | PeproTech | 100-18B | |
| 表皮生长因子 | PeproTech | AF-100-15 | |
| 肝素 | Sigma-Aldrich | H3149-25KU | |
| DMEM/F12培养基 | ThermoFisher | 11,320,033 | |
| N2添加剂 | Gibco | A13707–01 | |
| 非必需氨基酸 | Gibco | 11,140–050 | |
| 视黄酸 | Sigma-Aldrich | 302–79-4 | |
| 环磷酸腺苷 | Sigma-Aldrich | 60–92–4 | |
| 抗坏血酸 | Sigma-Aldrich | 50–81-7 | |
| 胶质细胞源性神经营养因子 | PeproTech | 450–10 | |
| 脑源性神经营养因子 | PeproTech | 450–02 | |
| 免疫荧光成像 | 腔室载玻片 | MatTek | CCS-8 |
| 蛋白质提取 | M-PER哺乳动物蛋白提取试剂 | ThermoFisher | 78,501 |
| 磷酸酶和蛋白酶抑制剂 | ThermoFisher | 1,862,495 and 78,438 | |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Pierce | 23,227 |
| 蛋白质印迹 | Criterion SDS凝胶 | Bio-Rad | 5,671,034 |
| 硝酸纤维素膜 | Bio-Rad | 162–0232 | |
| 增强化学发光底物 | ThermoFisher | 32,209 | |
| PCR扩增 | FastStart PCR预混液 | Sigma-Aldrich | 4,710,436,001 |
| 基因组DNA提取 | DNeasy血液和组织试剂盒 | Qiagen | 69,506 |
| 亚细胞分级分离 | NE-PER核和细胞质提取试剂盒 | ThermoFisher | 78,833 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| DNA修复效率检测 | DPR类型(PR、GR、GA)、I-SceI质粒剂量(1μg)、DPR质粒剂量(1μg)、转染试剂(Lipofectamine 2000 CD)、转染时间(48小时)、报告细胞系(U-2 OS) 阅读提示:Methods部分“Assessment of DNA repair efficiency”及图2图注 |
| NPM1敲低与过表达 | siRNA浓度(20μM NPM1或对照siRNA)、NPM1突变体(WT、NESΔ、NLSΔ、AΔ)、质粒来源(Addgene编号)、转染剂量(1μg PR质粒) 阅读提示:Methods部分“Expression of nucleophosmin-GFP fusion proteins”及“Quantification of nucleophosmin and PR sub-cellular localization” |
| iPSC培养与分化 | iPSC系(C9ALS-1, C9ALS-2, C9ALS-4, C9ALS-5)、培养条件(mTeSR1、Matrigel)、分化方案(NeuroCult SM1、bFGF、EGF、肝素等)、分化时间(至少4周) 阅读提示:Methods部分“iPSC culturing and neuronal differentiation” |
| 蛋白表达检测 | 组织来源(运动皮层、枕叶皮层、小脑)、诊断组(C9ALS、sALS、对照)、样本量(每组6例)、蛋白质上样量(30μg) 阅读提示:Methods部分“Protein isolation from post-mortem tissues and immunoblotting”及图6图注 |
| 基因编辑 | AAV载体(pAAV-CB-GFP-C9gR-2-3和pAAV-CB-GFP-C9gR-2-4)、转导时间(2周)、克隆筛选(PCR检测编辑) 阅读提示:Methods部分“CRISPR/Cas9 Adeno-associated viral vectors”及“Detection of genome editing” |