SE与MTC的遗传与物理互作验证
验证SE与MTC是否在同一遗传通路中发挥作用并存在直接物理互作。
构建mta、mtb、fip37敲低突变体,观察发育表型;RNA-seq比较se-2与mta差异表达基因;Y2H、Co-IP、LCI和BiFC验证SE与MTB、FIP37的互作。
SERRATE drives phase separation behaviours to regulate m6A modification and miRNA biogenesis.
涵盖体外相分离、细胞内荧光成像、植物遗传互补、m6A测序及体外重构等多层验证
拟南芥Col-0及se、mta、mtb等突变体 拟南芥叶肉原生质体 重组蛋白体外相分离体系 本氏烟草瞬时表达体系
se-2、mta、mtb等突变体的m6A整体水平及位点变化 SE与MTB互作关键残基R718及SE IDR1对相分离和功能的影响 SE–MTB共凝聚体对20S蛋白酶体降解的保护作用 MTC对MIRNA位点的染色质招募及pri-miRNA加工 ECT2对m6A修饰pri-miRNA的识别及加工增强
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证SE与MTC是否在同一遗传通路中发挥作用并存在直接物理互作。
构建mta、mtb、fip37敲低突变体,观察发育表型;RNA-seq比较se-2与mta差异表达基因;Y2H、Co-IP、LCI和BiFC验证SE与MTB、FIP37的互作。
评估SE缺失是否影响m6A整体水平及位点分布。
HPLC–MS定量poly(A)+ RNA的m6A含量;MeRIP-seq鉴定m6A峰;比较se-2、mta与Col-0的差异甲基化位点。
确定SE与MTB互作的关键区域和氨基酸残基。
使用IUPred3和AlphaFold2预测无序区域和互作界面;Y2H验证SE C端(469–720 aa)与MTB N端IDR(1–634 aa)互作;丙氨酸扫描确定R718为关键残基。
验证SE能否将MTB从不溶性凝聚体转变为液态样共凝聚体。
重组蛋白纯化后,在不同盐浓度和蛋白比例下进行体外相分离实验;使用1,6-HD处理、FRAP和融合实验评估相行为。
验证SE在植物细胞中赋予MTC液态样相行为。
在Col-0和se-1叶肉原生质体中共表达MTA-CFP、YFP-MTB和mCherry-SE及其变体;FRAP分析凝聚体流动性;1,6-HD处理;稳定转基因植株中观察MTB与SE共凝聚体。
检测SE缺失是否导致MTC蛋白不溶性增加和降解加速。
沉降实验比较Col-0与se-2中MTA/MTB的可溶与不溶组分;环己酰亚胺追踪MTB半衰期;20S蛋白酶体体外降解实验;MG-132和PYR-41处理。
验证SE介导的相分离是否促进MTC摄取RNA并增强m6A催化活性。
Cy5标记RNA与SE–MTC凝聚体共定位;MTA RIP-qPCR检测MTC结合的RNA;体外甲基化实验比较有无SE及其变体时的MTC活性。
验证MTC是否通过m6A依赖和非依赖方式促进pri-miRNA加工。
MeRIP-seq和MeRIP-qPCR鉴定pri-miRNA上的m6A位点;sRNA-seq和RT-qPCR检测miRNA水平;ChIP-qPCR检测MTA和SE在MIRNA位点的招募;EMSA检测MTA/MTB与pri-miRNA的结合;H3-RIP检测染色质上pri-miRNA的保留。
验证ECT2识别m6A修饰的pri-miRNA并促进微处理器切割。
核质分离和leptomycin B处理检测ECT2核定位;Co-IP和Y2H验证ECT2与微处理器互作;EMSA检测ECT2与m6A修饰或未修饰RNA的结合;体外微处理器重构实验检测ECT2对切割效率的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白纯化 | HisTrap HP柱 | GE Healthcare | 17-5248-02 |
| HiLoad 16/600 Superdex 200 pg柱 | -- | -- | |
| Western blot | 抗Flag抗体 | Sigma-Aldrich | A8592 |
| 抗肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A0480 | |
| 抗组蛋白3抗体 | Agrisera | AS10 710 | |
| 抗HSP70抗体 | Agrisera | AS08 371 | |
| 抗UGPase抗体 | Agrisera | AS14 2813 | |
| 抗GFP抗体 | Roche | 11814460001 | |
| Co-IP | 抗Flag M2磁珠 | Sigma-Aldrich | M8823 |
| GFP捕获磁珠 | ChromoTek | gtma | |
| RNA提取 | RNA纯化浓缩试剂盒 | ZYMO | R1017 |
| DNA纯化 | DNA纯化浓缩试剂盒 | ZYMO | D4004 |
| m6A检测 | m6A标准品 | TargetMol | T6599 |
| 腺苷标准品 | Sigma-Aldrich | A1852 | |
| mRNA分离 | oligo(dT)25磁珠 | NEB | S1419S |
| MeRIP-seq | m6A MeRIP试剂盒 | NEB | E1610S |
| 20S蛋白酶体活性检测 | 琥珀酰-Leu-Leu-Val-Tyr-7-氨基-4-甲基香豆素 | Sigma-Aldrich | S6510 |
| 细胞培养 | BaculoGold杆状病毒DNA | BD Biosciences | 554740 |
| sf9昆虫细胞 | BD Biosciences | 554738 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外相分离实验 | 蛋白浓度、盐浓度、SE与MTB比例、1,6-HD浓度、缓冲液配方 阅读提示:Methods中In vitro condensate formation小节及Fig. 2图注 |
| FRAP实验 | 光漂白参数、成像间隔、总记录时间、数据分析方法 阅读提示:Methods中FRAP小节及Fig. 2、Fig. 3、Extended Data Fig. 5、6图注 |
| m6A修饰检测 | MeRIP-seq抗体用量、RNA输入量、峰识别阈值、标准化方法 阅读提示:Methods中MeRIP-seq and data analysis小节及Fig. 1图注 |
| 体外甲基化实验 | RNA浓度、MTA/MTB浓度、SE变体浓度、SAM浓度、反应温度和时间 阅读提示:Methods中In vitro methylation assay小节及Fig. 4c,d图注 |
| 20S蛋白酶体降解实验 | 20S蛋白酶体浓度、MTB浓度、SE浓度、MG-132浓度、反应温度和时间 阅读提示:Methods中In vitro 20S proteasome decay assay小节及Fig. 4i–l图注 |
| 体外微处理器重构实验 | SE、HYL1、DCL1用量、ECT2浓度梯度、RNA用量、反应缓冲液和反应时间 阅读提示:Methods中In vitro microprocessor reconstitution assay小节及Fig. 8图注 |